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Gardon (poisson)

Rutilus rutilus

Le gardon (Rutilus rutilus) est une espèce de poissons d'eau douce très communs, souvent de petite taille entre 10 et 30 cm[1]. Il vit en Europe et en Asie de l'Ouest. Son nom latin d'espèce (Rutilus ; rouge éclatant) évoque probablement la couleur de ses nageoires, voire le rouge aux reflets métalliques de son œil (qui est cependant d'abord jaune chez le juvénile).

Dans la plus grande partie de son aire de distribution, il est le plus nombreux parmi les espèces de poissons présents, mais pour ce qui est de la biomasse, il peut être dépassé par la brème commune et la carpe commune dans les eaux à forte turbidité et à la végétation clairsemée.

Ce poisson grégaire n'effectue que de courts déplacements sur son territoire et on ne le considère donc pas comme migrateur. En saison froide, il migre vers les eaux profondes où il vit au sein de bancs qui peuvent être denses et atteindre des centaines d'individus (y compris dans les petits ports intérieurs).

Le gardon adulte est réputé préférer les eaux riches en végétaux dont certains sont consommés par les jeunes ou les adultes et où les alevins se cachent facilement.

Il peut s'adapter à des environnements où les invertébrés sont rares en ralentissant sa croissance.

Sa chair est appréciée, mais comme c'est l'une des espèces les plus tolérantes à la pollution, elle peut également parfois être polluée[2].

Synonymes (noms désuets) :

  • Abramis leuckartii (Heckel, 1836)
  • Cyprinus rutilus (LinnĂ©, 1758)
  • Leuciscus rutilus (GĂĽnther, 1868)
  • Leuciscus rutilus (Linnaeus, 1758)

La génétique de ce poisson a été fortement perturbée par son élevage et sa dissémination par les pêcheurs ; on en connait une seule sous-espèce (dans les bassins de la mer Noire et de la mer Caspienne ainsi qu'en Italie dans les Apennins), identifiable par des critères anatomiques[1] - [3].

Description

Exposition Subaqueous Vltava Ă  Prague.
Rassemblement estival de jeunes gardons, dans un fossé eutrophe et peu profond, mais ici très végétalisé (en zone à dominante très urbaine, mais dans l'enclave verte ceinturant de la Citadelle de Vauban à Lille).

Le Gardon est un chordé, ostéichthyen, téléostéen. C'est donc un vertébré, épineurien, avec une chorde (même si elle a disparu chez l'animal adulte on la voit lors du développement embryonnaire), qui présente une fente pharyngienne en relation avec la cavité buccale.

Il a un crâne osseux et un épiderme pluristratifié. Il est un bon exemple de l'adaptation des chordés à la vie aquatique (forte poussée d'Archimède, faible teneur en oxygène, aliments fixés, flottant ou en suspension…).

La plupart des gardons observĂ©s sont jeunes et petits et mesurent entre 10 et 30 cm pour un poids de 10 Ă  200 g. Leur forme varie progressivement au cours de l'ontogenèse, passant d'un profil fusiforme Ă  un corps plus haut. Seuls un petit nombre parmi eux atteindra l'âge adulte oĂą ils pourront atteindre environ 35 cm et exceptionnellement jusqu'Ă  45-50 cm[1]. Ils peuvent alors peser de 1 Ă  kg.

Le poisson a une forme hydrodynamique, il est quatre fois plus long que large. Il possède une nageoire caudale assez allongée et rougeâtre. Il a un œil dont le tour est rougeâtre et une bouche plutôt horizontale, Sa nageoire dorsale et ses nageoires pelviennes sont positionnées sur le même axe vertical (vu de profil), ces trois derniers critères permettent de le distinguer d'autres cyprinidés et notamment du rotengle (mais les hybrides peuvent être difficiles à distinguer).

Risques de confusion : avec le rotengle et l'ablette (pour les juvéniles) et avec divers hybrides (Gardon x autre cyprinidé).

Aire de répartition

Cette espèce serait originaire d'Europe centrale et de l'Est, avec comme limite septentrionale de son « aire de répartition initiale » la Finlande, la Suède et l'Angleterre, sa limite méridionale, les Alpes et le Bosphore[4].

Autochtone dans la plupart des eaux intérieures continentales d'Europe, il a été introduit par des pêcheurs et/ou pisciculteurs en Irlande, au Portugal, en Espagne, en Italie, en Grèce et à Chypre[5]. Il a aussi été introduit dans l'hémisphère sud (en Australie).

Plusieurs de ces pays ont signalé après son introduction qu'il semblait avoir un impact défavorable sur les espèces autochtones.

En France, il a Ă©tĂ© introduit en Corse en 1970 dans trois plans d'eau artificiels de la plaine orientale de l'Ă®le (RĂ©servoirs de Peri, Teppe-Rosse, Alzitone) pour en permettre la pĂŞche sportive en seconde catĂ©gorie (activitĂ© jusqu'alors inexistante). Ă€ partir de lĂ , des pĂŞcheurs l'ont introduit dans divers rĂ©servoirs de barrages (Ospedale, Tolla), gravières (Porto-Vecchio, Gravona), canaux (Biguglia) et cours de grandes rivières (Gravona, Tavignano) corses[6]

Paléontologie

Des restes fossiles osseux de gardons ont été trouvés dans les restes culinaires préhistoriques, par exemple dans des couches datées du Paléolithique supérieur dans le Bassin de la Garonne (à l'Aurignacien à Bezenac, Le Flageolet ; au Magdalénien à Couse, Lisle et St. Rabier) ou encore dans le Bassin du Rhône pour l'époque Magdalénienne à Sainte-Anastasie)[7].

Habitats

Cette espèce est rustique et relativement ubiquiste. Le gardon est rĂ©putĂ© prĂ©fĂ©rer vivre dans les parties profondes de la colonne d'eau, mais très adaptable, il peut aussi densĂ©ment coloniser des plans d'eau ou fossĂ©s de 20 centimètres de profondeur et Ă©troits de 1,5 m de large et s'adapte aux circonstances locales, et en Ă©tĂ© il frĂ©quente souvent la surface.

On le trouve aussi bien dans des zones boréales très froides et dans les zones de courants ou de remous (où il semble apprécier les fonds de 2 à m et les herbiers, et aussi les zones avec peu d'air) que dans des zones eutrophes et chaudes, dans des fossés de fortification, des canaux, voire des canaux fermés de pleine ville (Moyenne Deûle à Lille par exemple, fermée depuis 50 ans).

Dans les milieux pollués ou eutrophes, il n'atteint toutefois pas ou rarement sa taille maximale d'adulte.

Selon une étude basée sur des analyses génétiques faites en vallée du Rhône et publiée en 1999, pour des raisons mal comprises, selon les données acquises lors de cette étude, le gardon semble peu sensible ou insensible à la fragmentation ou à la différence de milieu ; alors que les données génétiques montrent qu'au sein de la métapopulation du bassin, le chevesne est génétiquement différent entre l'amont et l'aval du bassin ou d'un grand barrage, « aucune relation entre distance géographique et distance génétique n’a été mise en évidence pour le Gardon, quel que soit le sous-système testé »[8].

Il tolère une charge importante en polluants organiques, c'est l'une des dernières espèces à disparaître dans les eaux polluées, mais il est également souvent le plus présent (en nombre et parfois en biomasse) des cyprinidés dans les eaux oligotrophes (naturellement pauvres en nutriments). Il tolère aussi dans une certaine mesure l'eau saumâtre et peut fréquenter les estuaires. Il tolère les eaux tièdes mais meurt à partir de 31 °C (88 °F).

Comportement

C'est un poisson grégaire qui vit en groupe parfois important, mais presque toujours composés d'individus de la même taille. Ces bancs se rendent plus denses et plus vifs et nerveux en présence de prédateurs[9]. Les plus gros se tiennent toutefois un peu à l'écart des groupes.

Son activité est plutôt diurne[10].

Ses « réponses anti-prédation » (pour ce qui est de la capacité de fuite et du réflexe de se cacher) ont été étudiées par deux biologistes (Peter Eklöv et Lennart Persson)[9]. Ils ont pour cela recréé un système prédateurs-proies expérimental en enfermant des gardons (et de jeunes perchaudes) dans des enclos avec ou sans perches adultes (piscivores) comme « prédateur », et avec différentes offres en quantité et qualité de refuges (pas de structure-refuge du tout, une structure formant un refuge partiel, et une structure formant un refuge complet)[9]. Les comportements des proies et de leurs prédateurs ont ensuite été observés dans ces trois situations, ainsi que le nombre de proies tuées. Lors de cette expérience, les piscivores sont restés dans ou près du refuge des proies, et ils se dispersaient le plus dans les enclos disposant de refuges pour les proies. Sans surprise, la survie des jeunes perchaudes était améliorée dans l'enclos garni des refuges les plus efficaces, mais l'expérience a aussi montré que les gardons répondaient aussi à la présence de perches prédatrices en formant des bancs plus denses et en nageant nettement plus vite (non seulement en eau libre, mais également dans le refuge), réflexe qui leur a permis d'utiliser une superficie plus grande que ne le faisait la perche juvénile. En présence de prédateurs, les deux espèces-proies sont restées plus à proximité du refuge et y ont passé plus de temps. Le nombre d'aller-retour entre la zone d'eau libre et la zone refuge était plus élevée pour les gardons juvéniles que pour les jeunes perchaudes[9]. Ces dernières ont cependant utilisé les différentes parties du refuge de manière plus complexe et « flexible » en fonction à la fois de la présence du prédateurs et selon le type de refuge disponible (alors que les jeunes gardons en utilisaient les différentes parties de manière plus prévisible et dans des proportions identiques quel que soit le type de refuge[9]. Les résultats de cette étude suggèrent que le gardon juvénile est globalement mieux capable que les perchaudes juvéniles d'éviter la prédation. Toutefois, les jeunes perchaudes semblent répondre à la présence de prédateurs par une utilisation plus souple du refuge que le gardon juvénile[9]. La nature et la quantité de refuges (plantes, branches, caches… pourrait donc influencer différemment le taux de survie des jeunes perchaudes et des gardons face à des prédateurs tels que la perche[9].

Alimentation

L'alevin et le tout jeune gardon se nourrissent d'abord de zooplancton, puis grâce Ă  des modifications de la morphologie fonctionnelle au cours de l'ontogenèse il passe Ă  un rĂ©gime de macroinvertĂ©brĂ©s benthiques (quand il mesure environ vers 1,5 cm). Ses proies sont alors des petits mollusques, des larves d'insectes, des insectes tombĂ©s Ă  l'eau ou en train d'Ă©merger, alors prĂ©levĂ©s en surface.

Dans le Léman, son alimentation a été étudiée (et comparée à celle des corégones) à partir de l'inspection du contenu stomacal d'individus capturés à l'aide de chaluts pélagiques (pour les gardons seulement) et de filets maillants pélagiques ou de fond durant plusieurs saisons et années (de décembre 1983 à juillet 1985)[11]. Les chercheurs ont ainsi pu confirmer qu'en zone pélagique ces deux espèces sont bien « des planctonophages stricts », se nourrissant des mêmes proies de juin à octobre (Daphnia sp. et plus encore Leptodora kindtii et Bythotrephes longimanus essentiellement), mais les auteurs ont conclu qu'ils ne pouvaient néanmoins pas conclure à une « compétition alimentaire entre ces deux espèces de poissons faute de données suffisantes sur la biologie de leurs proies ».

Le gardon sait aussi varier son alimentation selon la saison et l'offre en nourriture du milieu, en prélevant de la mousse et des algues (qu'il broute en groupe parfois dense) sur les troncs et branches immergés ou les pierres.

Les pêcheurs attirent cet omnivore avec la plupart des appâts conventionnels comme le maïs, la fécule de blé, la mie de pain, les vers…

Des études ont cherché à mesurer la performance alimentaire de cette espèce (c'est-à-dire le taux d'attaque relié à la taille de l'individu) et la performance de quête de nourriture du gardon à différents âges[12].

Reproduction et croissance

Le frai a normalement lieu en avril-mai (avril-juin-juillet selon d'autres sources) dans une eau à au moins 12 °C et pas trop acide (si le pH de l'eau est inférieur à 5,5 le gardon ne peut pas reproduire avec succès), le plus souvent lors de journées ensoleillées. Les mâles présentent alors une livrée nuptiale caractérisée par de petits « tubercules de frai gris-blanc sur la tête et le dos. Les femelles aussi mais de manière moins développée »[5]. Ils sont parfois — à tort — confondus avec les symptômes d'une maladie.

La femelle pond de 150 000 Ă  300 000 Ĺ“ufs sur des plantes ou des branches immergĂ©es[13] ou sur le substrat si aucun autre support n'est disponible. La reproduction se dĂ©roule frĂ©quemment au mĂŞme endroit chaque annĂ©e.

Les grands mâles forment des bancs dans lesquels les femelles pĂ©nètrent. Elles y pondent et les Ĺ“ufs (naturellement collants au substrat) sont fertilisĂ©s par les mâles ; les poissons sont alors très excitĂ©s et peuvent ĂŞtre aperçus sautant frĂ©quemment hors de l'eau ; Une femelle de belle taille peut pondre jusqu'Ă  100 000 Ĺ“ufs[14] (350 000 Ĺ“ufs par kg de la femelle selon DORIS[5]).

Les Ĺ“ufs de couleur crème et d'un diamètre compris entre 1,1 et 1,5 mm Ă©closent après 4 Ă  10 jours[5] (selon la tempĂ©rature de l'eau). Les alevins grandissent moins vite dans l'eau froide, mais rattrapent souvent leur retard de croissance Ă  l'âge adulte. le jeune gardon atteint sa maturitĂ© sexuelle en 2 Ă  4 ans ; plus vite pour les mâles (en 2 Ă  3 ans) et plus tard pour les femelles (en 3 Ă  4 ans)[5].

Sa vitesse de croissance varie selon les interactions entre la tempĂ©rature de l'eau[15] et la richesse trophique du milieu[16]. Les reproducteurs mesurent majoritairement plus de 19 cm.

Des données qui semblent contradictoires existent sur l'influence de la température de l'eau sur la reproduction du gardon.

  • En rĂ©gion borĂ©ale, des populations de gardon Ă©tudiĂ©es dans de nombreux lacs pondent Ă  la mĂŞme date que 50 ans plus tĂ´t, mais dans une eau plus chaude (en moyenne de 3 °C) et plus basse qu'autrefois, ce qui laisse penser que la durĂ©e du jour (qui lui n'a pas changĂ©) est un facteur important pour le dĂ©clenchement de la ponte.
  • Une autre Ă©tude a Ă©tĂ© conduite en zone tempĂ©rĂ©e, en France. Elle a portĂ© sur deux sections de la Meuse situĂ©es l'une en amont (Ă  12,5 km) de la centrale nuclĂ©aire de Tihange et l'autre Ă  2,5 km en aval oĂą l'eau est rĂ©chauffĂ©e en moyenne de 3 °C (ce qui a pu ĂŞtre montrĂ© lors d'un arrĂŞt de 5 mois de la centrale)[17]. Ces deux sections sont supposĂ©es habitĂ©es par des populations diffĂ©rentes de gardon ; les populations « amont » et « aval » n'ayant thĂ©oriquement pas de contacts entre elles, en raison d'importants barrages-Ă©cluses. L'Ă©tude a montrĂ© une diffĂ©rence entre les poissons vivant dans les eaux rĂ©chauffĂ©es et non rĂ©chauffĂ©es ; en particulier : le frai est avancĂ© de 3 semaines en aval[17]. De plus, le volume de plusieurs types de cellules testiculaires des gardons Ă©tait plus important chez les gardons vivant en aval du barrage que chez ceux vivant dans une eau plus fraiche en amont[17]. Ici la photopĂ©riode ne semble donc pas ou peu influencer le processus de maturation des Ĺ“ufs, du sperme et la ponte, comparativement Ă  l'accroissement de la tempĂ©rature[17] (lequel peut aussi influencer la productivitĂ© planctonique et d'autres biomasses alimentaires pour le gardon).
  • Cette mĂŞme Ă©tude (sur la Meuse) a montrĂ© (lors des 34 pĂŞches faites au filet pour les besoins des scientifiques) que le sex-ratio de l'espèce Ă©tait dans tous les cas dĂ©sĂ©quilibrĂ© (avec toujours plus de femelles que de mâles, que ce soit en amont ou en aval de la centrale nuclĂ©aire) voire très dĂ©sĂ©quilibrĂ© (au point que l'Ă©tude n'a pas toujours pu atteindre le quota et ratio de mâles/femelles qui Ă©tait prĂ©vu, avec jusqu'Ă  5 fois plus de femelles que de mâles lors de deux des 34 pĂŞches et Ă  peine plus dans deux autres cas) ; pour une raison inconnue selon les auteurs, qui Ă©voquent une cause inexpliquĂ©e (diffĂ©rence de sex-ratio ou sĂ©lectivitĂ© inexpliquĂ©e du filet de pĂŞche ?)[17].

L’espérance de vie d'un gardon serait d'une dizaine d'années (maximum 14 ans)[5].

Fonction de relation

Protection

Le gardon possède un Ă©piderme pluristratifiĂ© de 100 ÎĽm mais non kĂ©ratinisĂ©, formĂ© de cellules jointives. L'Ă©piderme ne prĂ©sente pas de glandes mais des cellules glandulaires qui vont sĂ©crĂ©ter un mucus qui va protĂ©ger les Ă©cailles. Les Ă©cailles sont de nature osseuse, indĂ©pendantes et constituent un exosquelette, les Ă©cailles sont une ossification dermique. Ces Ă©cailles sont dites Ă©lasmoĂŻdes.

Exposition Subaqueous Vltava Ă  Prague.

Organes des sens et sensibilité

Le gardon présente des narines buccales en cul de sac qui ne s'ouvrent pas sur la cavité buccale.

Il possède sur le flanc une ligne d'écailles possédant un trou en communication avec le système nerveux et qui va détecter les variations de longueurs d'onde basse dues aux mouvements de l'eau, via des mécanorécepteurs.

Vision : Ses yeux distinguent les ultraviolets, les couleurs que nous voyons et mĂŞme une partie de l'infrarouge[5]
Les modifications temporelles de ses yeux et sa vision (résolution visuelle) ont été étudiés (comme ceux de la Perchaude (Perca flavescens) en relation avec certaines modifications de son comportement. La précision de sa vision varie avec l'âge (quand la taille de son cristallin augmente, ainsi que le nombre de cellules rétiniennes réceptrices [18] et sa vision semble meilleure que celle de la perchaude.

Locomotion

Il possède deux types de nageoires :

  • en nombre impair : les nageoires dorsales et les nageoires caudales ;
  • en nombre pair ; et rĂ©parties de part et d'autre de la symĂ©trie de l'animal et qui regroupent : les nageoires pelviennes Ă  l'arrière et les nageoires pectorales Ă  l'avant.

Les nageoires en nombre impair sont plutôt utilisées pour la stabilité et celles à nombre pair plutôt pour l'orientation.

Fonction de nutrition

Appareil respiratoire

Le gardon possède quatre paires de branchies, accolées et qui ont des poils qui filtrent les grosses particules. Les branchies sont en fait un empilement de branchies en forme de V. On a aussi des lamelles branchiales qui sont des surfaces d'échanges pour l'oxygène et cette surface d'échange est liée à la rapidité du poisson

Appareil circulatoire

Le cœur se situe à côté des branchies, ce qui va éjecter le sang dans les capillaires branchiaux avec une certaine pression. Le système de circulation est simple : le sang désoxygéné passe une fois dans le cœur.

Écologie

Interactions avec d'autres espèces

Il partage fréquemment son territoire avec la Brème et la Perche et peut être en compétition avec ces espèces si la nourriture vient à manquer[19]. Une étude des communautés de poissons de 32 lacs de Finlande (O. Sumari. 1971. Ann. Zool. Fenn. 8 : 406-421) avait conclu que « les principaux facteurs influant sur les populations de perches communes (Perca fluviatilis) étaient des facteurs biotiques dont le principal, d'après l'analyse, était la compétition interspécifique avec le gardon (Rutilus rutilus) », mais une analyse des mêmes données faite plus tard a conclu qu'on avait sous-estimé l'importance d'autre facteurs dont la conductivité et le pH dans « l'établissement de la structure des communautés de poissons »[19] ; ces deux facteurs dits abiotiques pourraient en partie mieux expliquer les variations d'abondance de la perche (mais « principalement par le biais de leurs effets sur le rendement d'autres espèces, en particulier du gardon »[19]. On a trouvé en Finlande neuf lacs contenant uniquement des perches, ou uniquement une association perches-piscivores, sans aucun gardon. L'étude de ces communautés lacustres laisse penser (sans surprise) que les autres poissons piscivores influent aussi sur la biomasse de perches[19]. Il a été montré que là où les deux espèces (gardon + perche) coexistent, plus la biomasse de piscivores est importante, plus la biomasse de gardons est importante, laissant supposer que « l'interaction piscivores-perche-gardon peut avoir fait intervenir la présence d'une compétition apparente entre la perche et le gardon »[19].

État des populations, menaces

Le gardon est un poisson rustique et prolifique, qui n'est pas globalement menacé, mais des situations de déclin[20] ou de disparition ont été localement constatées.

Même s'il dispose (dans une certaine mesure) de moyens de détoxication (via des protéines spécifiques (métallothionéines) connus chez d'autres espèces pour leurs rôles de détoxication des métaux lourds et d'autres classes de toxines, dont certains pesticides (ex fongicide procymidone[21]), il reste vulnérable aux fortes pollutions, qui peuvent le tuer directement ou indirectement en affaiblissant son système immunitaire et le rendant plus sensible aux maladies[22]. Des craintes existent quant aux effets de certaines perturbateurs endocriniens.

Il peut bioaccumuler certains toxiques (dont les organochlorés tels que certains pesticides, des PCB et dioxines) comme cela a été notamment montré dans le bassin de la Seine en France[2] et contribuer à ce qu'ils soient encore plus concentrés dans la chair de ses prédateurs (poissons tels que brochet ou oiseaux tels que héron, cormoran ou aigle pêcheur, ou encore des mammifères tels que la Loutre). Dans les secteurs pollués de la Seine, plus le gardon est grand et âgé, plus il est contaminé par des organochlorés, sans changement observé selon l'âge du type d'organochloré trouvé dans la chair du poisson ou selon l'origine du poisson ; les mêmes cocktails de polluants chlorés y ont été trouvés avec des proportions similaires, seule la dose change selon le degré de pollution du site[2].

Un autre problème pourrait être ses capacités d'adaptation à un réchauffement rapide des eaux au printemps. Une augmentation moyenne et précoce de la température de l'eau est constatée au printemps, notamment en boréale (ex : dans les eaux intérieures de l'Estonie, l'eau se réchauffe beaucoup plus vite qu'il y a 50 ans au printemps, ce qui a avancé la date de ponte des gardons et des brèmes[23] (avec alors une possible désynchronisation entre cycles de vie des prédateurs et de leurs proies).
En 40 années (de 1951 à 1990), le frai de la brème est devenu plus précoce de 10 jours, mais les températures de l'eau au moment du frai sont restées les mêmes. Par contre dans cette même région de l'Europe, il n'a pas été observé de changement de date du frai pour le gardon, qui pondait en 1990 dans une eau de 3 °C plus chaude que 40 ans plus tôt[23]. Ceci pourrait avoir des conséquences dans le réseau trophique et la niche écologique occupée par ces deux espèces[23]. Les alevins de brème et de gardon trouveront ou non le même type de nourriture qu'autrefois, selon que l'apparition de cette nourriture est induite par la température ou par la durée du jour. La différence entre la date de frai du gardon et de la brème s'est fortement réduite, passant (en moyenne, et de 1951 à 1990) de 22 à 13 jours[23]. Une autre différence est le niveau de l'eau qui est plus bas qu'autrefois pour le gardon au moment de l'éclosion au printemps (il a été noté par les ichtyologues estoniens que « les années où les niveaux d'eau était plus élevés en Mars ou Avril ces deux espèces de poissons ont commencé à frayer plus tôt »[23], et l'effet des variations du niveau de l'eau sur la ponte ayant été plus prononcé dans le lac Lac Võrtsjärv (eutrophe [et donc riche en plancton], profond et second plus grand lac d'Estonie) que dans le Lac Peïpous moins profond)[23].

Maladies

Comme tous les poissons, le gardon peut être victime de bactérioses et viroses ainsi que d'attaques fongiques et de malformations congénitales ou induites par l'effet de toxines sur l'œuf fécondé ou la larves. Ces maladies peuvent le tuer ou l'affaiblir et provoquer des retards de croissance[24].

Il est souvent porteur de divers parasites, internes (endoparasites tels que Ligula intestinalis[25], cestode de la famille des Pseudophyllidea) ou externes (ectoparasites). Ces parasites l'infestent temporairement ou à vie (vie pouvant alors être abrégée par le parasite qui épuise le poisson, ou change son comportement en le rendant plus vulnérable aux hérons, cormorans[26] ou autre oiseau ou animal prédateur piscivore)[27], ces derniers jouant donc un rôle important en matière de sélection naturelle. Depuis les années 1990, sauf dans des cas particulier (parasites introduits notamment) les parasitoses ne sont plus uniquement considérées comme une menace pour les individus et encore moins pour l'espèce, elles jouent un rôle important dans la sélection naturelle[28], le non-dépassement de la capacité de charge d'un écosystème ou d'une niche écologique et la coévolution entre espèces.

Les parasites et la charge parasitaire diffèrent selon les lieux où sont prélevés les gardons, mais de manière générale pour L. intestinalis qui a fait l'objet d'études dans des milieux différents ; les jeunes gardons semblent nombreux à être parasités, avec une charge parasitaire maximale chez les gardons d'âge moyen, et une diminution ensuite avec l'âge (diminution dont on ignore encore si elle est due (et si oui dans quelle mesure) à la sélection naturelle qui a éliminé les individus les plus parasités (par mortalité directe ou par risque accru de prédation), ou aussi dans une certaine mesure à l'acquisition d'une résistance accrue aux cestodes chez le gardon adulte.

On a confirmé au moins par deux études[29] dont l'une en laboratoire dans un grand aquarium que le cestode L. intesinalis modifie le comportement du gardon infesté, qui ne réagit plus au stimulus qu'est la présence d'un héron en surface (en surplomb de l'aquarium), stimulus qui devrait provoquer sa fuite vers une zone plus profonde (« les poissons infectés nageaient près de la surface et les poissons sains semblaient préférer le fond de l’aquarium […], les poissons infectés étaient moins actifs que les poissons sains avant, pendant et après l’introduction du prédateur. Ces différences de comportement, retour en surface, nage et réponse au stimulus, favorisent probablement la prédation des gardons infectés par des oiseaux prédateurs » (quand ils sont présents). Un tel changement de comportement induit par un parasite n'est pas inhabituel dans la Nature, il a été observé chez de nombreuses espèces et est classé parmi les phénomènes d'« interactions durables ».

Élevage

La pisciculture française en produisait presque 2 000 t/an au passage de l'an 2000, surtout vendu aux sociĂ©tĂ©s de pĂŞche pour (re)constituer des bancs de poisson fourrages, et Ă©galement vendu aux pĂŞcheurs comme vifs (pour la pĂŞche au coup)[30]. Les pratiques de repeuplement piscicole ou d'apports en poisson fourrage constituent des « apports numĂ©riquement importants et rĂ©gulièrement rĂ©pĂ©tĂ©s sur de nombreux Ă©cosystèmes naturels ». Ils sont (ou ont Ă©tĂ©) pratiquĂ©s par un grand nombre de sociĂ©tĂ© de pĂŞche pour espĂ©rer pĂŞcher plus de poissons prĂ©dateurs piscivores tels que les brochets. Ces apports sont de plus en plus critiquĂ©s, car susceptible de bouleverser et affaiblir la diversitĂ© gĂ©nĂ©tique des sous-populations de gardon au sein de leur mĂ©tapulation (et donc de dĂ©grader la biodiversitĂ©). Ces pratiques prĂ©sentent aussi « des risques sanitaires importants, non spĂ©cifiquement dĂ©montrĂ©s Ă  ce jour en France et de perturbations du fonctionnement de ces Ă©cosystèmes »[30]. Ces effets peuvent ĂŞtre aggravĂ©s par le fait que le Gardon peut facilement s'hybrider avec de nombreuses autres espèces de cyprinidĂ©s et qu'il est connu pour vĂ©hiculer au moins deux maladies parasitaires dues Ă  des endoparasites (la bucĂ©phalose larvaire et la ligulose lĂ  oĂą les copĂ©podes sont nombreux comme dans les lacs naturels, rĂ©servoirs et Ă©tangs) et par suite infester les prĂ©dateurs qui le consomment (poissons ichtyophages et oiseaux piscivores respectivement dans ces deux cas)[31].

Risques sanitaires, toxicologiques et Ă©cotoxicologiques

Quand il vit ou a vécu dans une eau polluée ou en présence de sédiments pollués, le gardon fait partie des poissons reconnus comme étant faiblement bioaccumulateurs.

En raison de sa capacité à bioconcentrer les métaux lourds, certains métalloïdes ou des polluants peu biodégradables tels que les PCB, furanes ou dioxines, il peut donc — dans certains milieux aquatiques pollués — être durablement ou provisoirement interdit de pêche, de détention et de toute commercialisation, dont en France[32].

Noms vernaculaires

Images

Voir aussi

Articles connexes

Références taxonomiques

Liens externes

Bibliographie

  • Angelibert S, Brosse S, Dauba F & Lek S (1999) Changes in roach (Rutilus rutilus L.) population structure induced on draining a large reservoir. C. R. Acad. Sci. III Paris, 32 2 : 331-338
  • Baranyi, C., Gollmann, G., and Bobin, M. (1997) Genetic and morphological variability in roach, Rutilus rutilus, from Austria. Hydrobiologia, 350: 13–23 (rĂ©sumĂ©).
  • Bouvet, Y., Soewardi, K., & Pattee, E. (1991) The discrimination of roach Rutilus rutilus (Linnaeus, 1758) populations in different parts of a river system. An investigation using biochemical markers. Hydrobiologia, 209(2), 161-167 (rĂ©sumĂ©).
  • Bouvet, Y., Bobin, M., Maslin, J.L., and PattĂ©e, E. (1995) The genetic structure of roach populations in two contrasted large rivers. Hydrobiologia, 303: 229–234.
  • Breton, B., Sambroni, E., & Gillet, C. (1988) Gonadotropin releasing hormone (GnRH) and gonadotropin (GtH) variations around the spawning period in a wild population of roach (Rutilus rutilus) from Leman lake. II-The male. Aquatic Living Resources, 1(02), 101-106 (rĂ©sumĂ©).
  • Brosse S, Gabas S, Cever K & Lek S (1999) Comparison of two point abundance sampling methods to assess young roach (Rutilus rutilus L.) microhabitat in the littoral zone of lake Pareloup (France) / Comparaison de deux mĂ©thodes d'Ă©chantillonnage ponctuel d'abondance pour l'estimation du microhabitat du jeune gardon (Rutilus rutilus L.) en zone littorale du lac de Pareloup (France) In Annales de Limnologie-International Journal of Limnology (septembre 1999, Vol. 35, no 03, p. 199-204). EDP Sciences.
  • Burrough RJ & Kennedy CR (1979) The occurrence and natural alleviation of stunting in a population of roach, Rutilus riitilus (L.). J. Fish Biol., 15 : 93-109
  • Copp G.H (1990) Shifts in the microhabitat of larval and juvenile roach, Rutilus rutilus L . in a floodplain channel. / Fish Biol, 36 : 683-692.
  • Ekengren B, Lindahl K & Fridberg G (1978) Immunocytology and innervation of the gonadotropic cells in the teleost fish Rutilus rutilus. Acta Zoologica, 59(2), 125-133 (rĂ©sumĂ©).
  • EklĂ´v P & Persson L (1995) Species-specific antipredator capacitie s and prey refuges : interactions between piscivorous perch, (Perca fluviatilis), and juvenile perch and roach, (Rutilus rutilus). Behav. Ecol. Sociobiol, 3 7 : 169-178
  • Guillard J & Gerdeaux D (1993) In situ determination of the target strength of roach (Rutilus rutilus) in lake Bourget with a single beam sounder. Aquatic Living Resources, 6(03), 285-289 (rĂ©sumĂ©).
  • Jurajda, P. (1998). Drift of larval and juvenile fishes, especially Rhodeus sericeus and Rutilus rutilus, in the River Morava (Danube basin). Archiv fĂĽr Hydrobiologie, 141(2), 231-241 (rĂ©sumĂ©).
  • Laroche J, Durand JD, Bouvet Y, Guinand B & Brohon B (1999) Genetic structure and differentiation among populations of two cyprinids, Leuciscus cephalus and Rutilus rutilus, in a large European river Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 56(9), 1659-1667.
  • L’AbĂ©e-Lund, J.H., and Vollestad, A. (1985) Homing precision of roach Rutilus rutilus in Lake Arungen, Norway. Environ. Biol. Fishes, 13: 235–239.
  • Loot G, Aulagnier S, Lek S, Thomas F & GuĂ©gan JF (2002) Experimental demonstration of a behavioural modification in a cyprinid fish, Rutilus rutilus (L.), induced by a parasite, Ligula intestinalis (L.). Canadian journal of zoology, 80(4), 738-744
  • Ponton D & Gerdeaux D (1988) Quelques aspects de l'alimentation de deux poissons planctonophages du Lac LĂ©man: le CorĂ©gone (Coregonus schinzii palea Cuv. et Val.) et le gardon (Rutilus rutilus L.). Bulletin Français de la PĂŞche et de la Pisciculture, (308), 11-23.
  • Richeux C, Dubois C, Arias-Gonzalez JE & Tourenq JN (1994)RĂ©gime et comportement alimentaires du gardon (Rutilus nitibis (L.)) et de la perche (Percaflziviatilis L.) de la retenue de Pare-loup II. Les adultes. Hydrokologie appliquĂ©e, 6 : 243-256.
  • Wanzenböck, J., Zaunreiter, M., Wahl, C. M., & Noakes, D. L. (1996) Comparison of behavioural and morphological measures of visual resolution during ontogeny of roach (Rutilus rutilus) and yellow perch (Perca flavescens). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 53(7), 1506-1512 ([Wanzenböck, J., Zaunreiter, M., Wahl, C. M., & Noakes, D. L. (1996). Comparison of behavioural and morphological measures of visual resolution during ontogeny of roach (Rutilus rutilus) and yellow perch (Perca flavescens). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 53(7), 1506-1512. (http://www.nrcresearchpress.com/doi/abs/10.1139/f96-082?journalCode=cjfas#.U8w0abHWi8A rĂ©sumĂ©])
  • Wolter, C. (1998) Estimation of gene flow between subpopulations of bream, Abramis brama, white bream, Abramis bjoerkna, roach, Rutilus rutilus, and rudd, Scardinius erythrophthalmus, within the River Spree basin. Ber. Inst. Gewässerökol. Binnenfisch. (Berl.), 5: 71–78.

Notes et références

  1. Kottelat M & Freyhof J (2007) Handbook of European freshwater fishes. Publications Kottelat, Cornol, Switzerland. 646 p.source retenue par Fishbase
  2. Blanchard, M., Teil, M. J., Carru, A. M., Chesterikoff, A., & Chevreuil, M. (1997) Organochlorine distribution and mono-orthosubstituted PCB pattern in the roach (Rutilus rutilus) from the River Seine. Water Research, 31(6), 1455-1461 (résumé).
  3. Fiche gardon de la base de données Fishbase, voir le § intitulé Short description
  4. Keith P (2003) Le Gardon : Rutilus rutilus (Linné, 1758). Pages 122-123, in : Évolution holocène de la faune de Vertébrés de France : invasions et disparitions (M.Pascal, O. Lorvelec, J.-D. Vigne, P. Keith & P. Clergeau, coordonnateurs), INRA, CNRS, MNHN (381 pages). Rapport au Ministère de l'Écologie et du Développement Durable (Direction de la Nature et des Paysages), Paris, France. Version définitive du 10 juillet 2003 (fiche Gardon)
  5. Fiche Gardon de DORIS, consulté 2014-07-21
  6. Roché B & Mattei J (1997) Les espèces animales introduites dans les eaux douces de Corse. Bulletin Français de Pêche et de Pisciculture, 344/345 : 233-241.
  7. Cleyet-Merle JJ (1990) La préhistoire de la pêche. Collection des Hespérides, Errance Éd., Paris : 195 pp
  8. Laroche J, Durand JD, Bouvet Y, Guinand B & Brohon B (1999) Genetic structure and differentiation among populations of two cyprinids, Leuciscus cephalus and Rutilus rutilus, in a large European river Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 56(9), 1659-1667
  9. Eklöv P & Persson L (1995)Species-specific antipredator capacities and prey refuges: interactions between piscivorous perch (Perca fluviatilis) and juvenile perch and roach (Rutilus rutilus) ; Behavioral Ecology and Sociobiology ; septembre 1995, vol.37, n03, p. 169-178 (résumé)
  10. Hammer C. ; Temming A. ; Schubert H.-J. ; Diurnal variations in swimming activity of Rutilus rutilus (Cyprinidae) in a group under tank conditions, Univ. Hamburg, Inst. Hydrobiologie Fischereiwissenschaft, in « Internationale Revue der gesamten Hydrobiologie » (ISSN 0020-9309) Coden Ighyaz, 1994, vol. 79, no3, p. 385-396 (1 p.1/4) (en) Éditeur : Akademie-Verlag, Berlin, Allemagne ref INIST-CNRS
  11. Ponton D & Gerdeaux D (1988) Quelques aspects de l'alimentation de deux poissons planctonophages du Lac Léman: le Corégone (Coregonus schinzii palea Cuv. et Val.) et le gardon (Rutilus rutilus L.). Bulletin Français de la Pêche et de la Pisciculture, (308), 11-23(résumé)
  12. Hjelm, J., van de Weerd, G. H., & Sibbing, F. A. (2003). Functional link between foraging performance, functional morphology, and diet shift in roach (Rutilus rutilus). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 60(6), 700-709. (résumé)
  13. ex : photo du site DORIS montrant une ponte sur une branche de sapin immergée en pleine eau par des plongeurs
  14. Fédération de pêche de l’Allier, « Le gardon » Accès libre, sur Fédération de Pêche de l'Allier (03) (consulté le )
  15. Mooij WM & Tongeren OV (1990) Growth of 0+ roach (Rutilus rutilus) in relation to temperature and size in a shallow eutrophic lake : comparison of field and laboratory observations. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 47(5), 960-967.
  16. Wieser, W., Forstner, H., Schiemer, F., & Mark, W. (1988) Growth rates and growth efficiencies in larvae and juveniles of Rutilus rutilus and other cyprinid species: effects of temperature and food in the laboratory and in the field. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 45(6), 943-950 (résumé).
  17. Mattheeuws A, Genin M, Detollenaere A & Micha JC (1981) Étude de la reproduction du gardon (Rutilus rutilus) et des effets d'une élévation provoquée de la température en Meuse sur cette reproduction. Hydrobiologia, 85(3), 271-282. (lien)
  18. Wanzenböck, J., Zaunreiter, M., Wahl, C. M., & Noakes, D. L. (1996). Comparison of behavioural and morphological measures of visual resolution during ontogeny of roach (Rutilus rutilus) and yellow perch (Perca flavescens). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 53(7), 1506-1512. (résumé)
  19. Persson L (1997) Competition, predation and environmental factors as structuring forces in freshwater fish communities: Sumari (1971) revisited. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 54(1), 85-88.
  20. Wilson RS (1971) The decline of a roach Rutihs rutilus (L.) population in Chew Valley Lake. J. Fish Bid, 3 : 129-137
  21. Paris-palacios, S., Biagianti-risbourg, S., & Vernet, G. (2003). Metallothionein induction related to hepatic structural perturbations and antioxidative defences in roach (Rutilus rutilus) exposed to the fungicide procymidone. Biomarkers, 8(2), 128-141 (résumé).
  22. Loot G, Lek S, Dejean D, & Guégan JF (2001) Parasite-induced mortality in three host populations of the roach Rutilus rutilus (L.) by the tapeworm Ligula intestinalis (L.). In Annales de Limnologie-International Journal of Limnology, juin 2001 (Vol. 37, No. 02, p. 151-159). EDP Sciences.
  23. Nõges, P., & Järvet, A. (2005). Climate driven changes in the spawning of roach(Rutilus rutilus(L.)) and bream(Abramis brama(L.)) in the Estonian part of the Narva River basin. Boreal Environment Research, 10(1), 45-55
  24. Burrough RJ & Kennedy CR (1979) The occurrence and natural alleviation of stunting in a population of roach, Rutilus riitilus (L.). J. Fish Biol., 15 : 93-109
  25. Sweeting RA (1976) Studies on Ligula intestinalis. Effects on a roach population in gravel pit. J. Fish Biol., 9 : 515-522.
  26. Van Dobben WH (1952) The food of the cormorant in the Netherlands. Adea, 40 ; 1-63.
  27. Loot G, Aulagnier S, Lek S, Thomas F & Guégan JF (2002) Experimental demonstration of a behavioural modification in a cyprinid fish, Rutilus rutilus (L.), induced by a parasite, Ligula intestinalis (L.). Canadian journal of zoology, 80(4), 738-744
  28. Thomas F, Poulin R, De MeeOs T, Guégan JF & Renaud E (1999) Parasites and ecosystem engineering : what roles could they play ? Oikos, 84 (1) : 167-171
  29. Bean C.W & Winfield LJ. (1992) Influences of the tapeworm Ligula intestinalis (L.) on the spatial distributions of juvenile roach Rutilus rutilus (L.) and gudgeon Gobio gobio (L.) in Lough Neagh, northem Ireland. J. Zool., 42,2-3 : 416-429
  30. Le Louarn H., Feunteun E. & Laffaille P., 2001. Le Gardon Rutilus rutilus (Linné, 1758). In : Atlas des poissons d'eau douce de France (Keith P. & Allardi J. Édit.). Patrimoines naturels, MNHN, Paris, no 47 : 196-197.
  31. Lambert A (1997) Introduction de poissons dans les milieux aquatiques continentaux : "Quid de leurs parasites ?". Bulletin Français de Pêche et de Pisciculture, 344/345 : 323-333.
  32. ARS (Agence régionale de santé Nord- Pas- de- Calais)Arrêté interpréfectoral portant interdiction de consommation, de commercialisation, et de détention de certaines espèces de poissons pêchés dans les cours d'eau des départements du Nord et du Pas-de-Calais. Arrêté n° 2014202-0003 signé par Dominique BUR - Préfet du Nord Denis ROBIN, Préfet du Pas- de- Calais - le 21 juillet 2014]
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