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Succinyl-coenzyme A synthétase

La succinyl-CoA synthétase (SCS), également appelée succinate thiokinase et succinate-CoA ligase, est une ligase qui catalyse la réaction :

+ GDP / ADP + Pi GTP / ATP + CoA +
Succinyl-CoA Succinate
Succinyl-coenzyme A synthétase à GTP
Caractéristiques générales
Nom approuvé Succinate-CoA Ligase (GTP)
Symbole SUCLG
N° EC 6.2.1.4
GĂšne SUCLG1 – Sous-unitĂ©s α
Homo sapiens
Locus 2p11.2
Masse molĂ©culaire 36 250 Da[1]
Nombre de rĂ©sidus 346 acides aminĂ©s[1]
Liens accessibles depuis GeneCards et HUGO.
GĂšne SUCLG2 – Sous-unitĂ©s ÎČ
Homo sapiens
Locus 3p14.1
Masse molĂ©culaire 46 511 Da[1]
Nombre de rĂ©sidus 432 acides aminĂ©s[1]
Liens accessibles depuis GeneCards et HUGO.
Succinyl-coenzyme A synthétase à ATP
Caractéristiques générales
Nom approuvé Succinate-CoA Ligase (ATP)
Symbole SUCLA
N° EC 6.2.1.5
Homo sapiens
Locus 13q14.2
Masse molĂ©culaire 50 317 Da[1]
Nombre de rĂ©sidus 463 acides aminĂ©s[1]
Liens accessibles depuis GeneCards et HUGO.

Cette enzyme de la matrice mitochondriale des eucaryotes catalyse la seule phosphorylation au niveau du substrat du cycle de Krebs. Elle rĂ©alise le couplage d'une rĂ©action exergonique, l'hydrolyse de la Succinyl-CoA en succinate, avec la phosphorylation de l'ADP ou du GDP en ATP ou en GTP respectivement, qui est une rĂ©action endergonique. La variation d'enthalpie libre standard rĂ©sultante de cette rĂ©action vaut ΔG°’ = −3,4 kJ·mol-1.

Il existe deux isoformes de cette enzyme, spécialisées chacune pour un nucléoside triphosphate particulier :

Description de cette image, également commentée ci-aprÚs
Structure d'une succinyl-CoA synthétase à GTP de porc cristallisée avec le GTP (PDB 2FP4[2]).
N° EC EC 6.2.1.4
N° CAS 9014-36-2

Structure et mécanisme

Les succinyl-CoA synthĂ©tases de bactĂ©ries et de mammifĂšres sont constituĂ©es de sous-unitĂ©s α et ÎČ[4]. Chez Escherichia coli, deux hĂ©tĂ©rodimĂšres αÎČ s'assemblent pour former une structure hĂ©tĂ©rotĂ©tramĂ©rique α2ÎČ2, tandis que les enzymes mitochondriales de mammifĂšres sont actives comme simples hĂ©tĂ©rodimĂšres αÎČ et ne forment pas d'hĂ©tĂ©rotĂ©tramĂšres[5].

La structure tĂ©tramĂ©rique bactĂ©rienne a Ă©tĂ© cristallisĂ©e et caractĂ©risĂ©e de maniĂšre trĂšs dĂ©taillĂ©e[5] - [6]. Comme le montre l'image ci-dessous, les deux sous-unitĂ©s α se trouvent de chaque cĂŽtĂ© de la structure tandis que les deux sous-unitĂ©s ÎČ interagissent dans les rĂ©gions centrales de la protĂ©ine. Dans cette configuration, chaque sous-unitĂ© α interagit avec une sous-unitĂ© ÎČ tandis que chaque sous-unitĂ© ÎČ interagit avec l'autre sous-unitĂ© ÎČ et l'une des deux sous-unitĂ©s α[5].

Structure d'un hĂ©tĂ©rotĂ©tramĂšre α2ÎČ2 de succinyl-CoA synthĂ©tase d'E. coli montrant les sous-unitĂ©s α en vert et en rose et les sous-unitĂ©s ÎČ en jaune et en bleu (PDB 1CQI[7]).

La structure cristallisée de la sous-unité α de la succinyl-CoA synthétase a été déterminée à une résolution de 0,21 nm (PDB 1CQJ[7]).

La coenzyme A se lie dans un pli Rossmann à l'intérieur des sous-unités α à proximité du résidu His246α[5]. Ce résidu est phosphorylé au cours de la réaction. On a ainsi pu montrer qu'un antibiotique qui bloque la phosphorylation des résidus d'histidine agit également comme inhibiteur puissant de la succinyl-CoA synthétase bactérienne[8].

Le site de liaison du succinate n'est pas connu avec précision[9].

MĂ©canisme proposĂ© pour la formation des nuclĂ©osides triphosphates. « NDP Â» reprĂ©sente l'ADP ou le GDP, tandis que « NTP Â» reprĂ©sente l'ATP ou le GTP.

La formation du nuclĂ©oside triphosphate se produit dans un domaine de liaison Ă  l'ATP, situĂ© Ă  proximitĂ© de l'extrĂ©mitĂ© N-terminale de chaque sous-unitĂ© ÎČ. Ce domaine de liaison Ă  l'ATP est cependant distant d'environ 3,5 nm du rĂ©sidu d'histidine phosphorylĂ©[7]. Ceci laisse penser que l'enzyme subit une modification conformationnelle importante pour amener ce rĂ©sidu d'histidine Ă  proximitĂ© du site de liaison Ă  l'ATP et permettre la formation du nuclĂ©oside triphosphate. Des expĂ©riences par mutagenĂšse ont Ă©tabli que deux rĂ©sidus de glutamate — le Glu208α Ă  proximitĂ© de l'His246α et le Glu197ÎČ Ă  proximitĂ© du site de liaison Ă  l'ATP — jouent un rĂŽle dans la phosphorylation et la dĂ©phosphorylation de l'histidine, mais le mĂ©canisme exact de ces modifications conformationnelles n'est pas entiĂšrement compris[9].

Fonctions et régulation

La succinyl-CoA synthĂ©tase est la seule enzyme du cycle de Krebs qui catalyse une phosphorylation au niveau du substrat. Les enzymes d'E. coli phosphorylent aussi bien le GDP que l'ADP[6]. En revanche, les mammifĂšres possĂšdent plusieurs types de succinyl-CoA synthĂ©tases, chacune Ă©tant spĂ©cifique pour le GDP (isoforme G-SCS) ou pour l'ADP (isoforme A-SCS). Ces isoformes sont exprimĂ©es chacune dans des tissus spĂ©cifiques. Par exemple, on a pu montrer que, chez les pigeons, les G-SCS sont exprimĂ©es dans les hĂ©patocytes (cellules du foie) tandis que les A-SCS sont exprimĂ©es dans les myocytes (cellules musculaires) pectoraux[10]. D'autres Ă©tudes ont mis en Ă©vidence des caractĂ©ristiques semblables chez le rat, la souris, et chez l'homme : il apparaĂźt ainsi que les tissus intervenant essentiellement dans l'anabolisme, tels que le foie et les reins, tendent plutĂŽt Ă  exprimer la G-SCS, tandis que les tissus intervenant essentiellement dans le catabolisme, tels que le cerveau, le cƓur et les muscles, tendent plutĂŽt Ă  exprimer l'A-SCS[11].

La succinyl-CoA synthĂ©tase facilite les flux de molĂ©cules vers d'autres voies mĂ©taboliques en contrĂŽlant les interconversions entre la succinyl-CoA et le succinate[12]. Cette fonction est importante dans la mesure oĂč la succinyl-CoA est un intermĂ©diaire indispensable Ă  la biosynthĂšse de la porphyrine, de l'hĂšme[13] et des corps cĂ©toniques[14].

Cette enzyme est rĂ©gulĂ©e au niveau de sa transcription[15]. On a pu montrer que le gĂšne sucCD, qui encode cette protĂ©ine, est transcrit en mĂȘme temps que le gĂšne sucAB encodant le complexe α-cĂ©toglutarate dĂ©shydrogĂ©nase, sous le contrĂŽle d'un promoteur, appelĂ© sdhC, qui appartient Ă  l'opĂ©ron succinate dĂ©shydrogĂ©nase. Cet opĂ©ron est activĂ© en prĂ©sence d'oxygĂšne et rĂ©pond Ă  un grand nombre de sources carbonĂ©es.

Notes et références

  1. Les valeurs de la masse et du nombre de résidus indiquées ici sont celles du précurseur protéique issu de la traduction du gÚne, avant modifications post-traductionnelles, et peuvent différer significativement des valeurs correspondantes pour la protéine fonctionnelle.
  2. (en) Marie E. Fraser, Koto Hayakawa, Millicent S. Hume, David G. Ryan et Edward R. Brownie, « Interactions of GTP with the ATP-grasp Domain of GTP-specific Succinyl-CoA Synthetase », Journal of Biological Chemistry, vol. 281, no 16,‎ , p. 11058-11065 (PMID 16481318, DOI 10.1074/jbc.M511785200, lire en ligne)
  3. (en) Marie E. Fraser, Michael N.G. James, William A. Bridger3 et William T. Wolodko, « A detailed structural description of Escherichia coli succinyl-CoA synthetase », Journal of Molecular Biology, vol. 285, no 4,‎ , p. 1633-1653 (PMID 9917402, DOI 10.1006/jmbi.1998.2324, lire en ligne)
  4. (en) Jonathan S. Nishimura, « Succinyl-CoA Synthetase Structure-Function Relationships and Other Considerations », Advances in Enzymology and Related Areas of Molecular Biology, vol. 58,‎ , p. 141-172 (PMID 3521216, DOI 10.1002/9780470123041.ch4, lire en ligne)
  5. (en) William T. Wolodko, Cyril M. Kay et William A. Bridger, « Active enzyme sedimentation, sedimentation velocity, and sedimentation equilibrium studies of succinyl-CoA synthetases of porcine heart and Escherichia coli », Biochemistry, vol. 25, no 19,‎ , p. 5420-5425 (PMID 3535876, DOI 10.1021/bi00367a012, lire en ligne)
  6. (en) Marie E. Fraser, Michael N.G. James, William A. Bridger et William T. Wolodko, « A detailed structural description of Escherichia coli succinly-CoA synthetase », Journal of Molecular Biology, vol. 288, no 3,‎ , p. 501 (PMID 10329157, DOI 10.1006/jmbi.1999.2773, lire en ligne)
  7. (en) Michael A. Joyce, Marie E. Fraser, Michael N. G. James, William A. Bridger et William T. Wolodko, « ADP-Binding Site of Escherichia coli Succinyl-CoA Synthetase Revealed by X-ray Crystallography », Biochemistry, vol. 39, no 1,‎ , p. 17-25 (PMID 10625475, DOI 10.1021/bi991696f, lire en ligne)
  8. (en) Isabel Hunger-Glaser, Reto Brun, Markus Linder et Thomas Seebeck, « Inhibition of succinyl CoA synthetase histidine-phosphorylation in Trypanosoma brucei by an inhibitor of bacterial two-component systems », Molecular and Biochemical Parasitology, vol. 100, no 1,‎ , p. 53-59 (PMID 10376993, DOI 10.1016/S0166-6851(99)00032-8, lire en ligne)
  9. (en) Marie E. Fraser, Michael A. Joyce, David G. Ryan et William T. Wolodko, « Two Glutamate Residues, Glu 208α and Glu 197ÎČ, Are Crucial for Phosphorylation and Dephosphorylation of the Active-Site Histidine Residue in Succinyl-CoA Synthetase », Biochemistry, vol. 41, no 2,‎ , p. 537-546 (PMID 11781092, DOI 10.1021/bi011518y, lire en ligne)
  10. (en) James D. Johnson, Wallace W. Muhonen et David O. Lambeth, « Characterization of the ATP- and GTP-specific succinyl-CoA synthetases in pigeon. The enzymes incorporate the same α-subunit », Journal of Biological Chemistry, vol. 273, no 42,‎ , p. 27573-27579 (PMID 9765290, DOI 10.1074/jbc.273.42.27573, lire en ligne)
  11. (en) David O. Lambeth, Kristin N. Tews, Steven Adkins, Dean Frohlich et Barry I. Milavetz, « Expression of Two Succinyl-CoA Synthetases with Different Nucleotide Specificities in Mammalian Tissues », Journal of Biological Chemistry, vol. 279, no 35,‎ , p. 36621-36624 (PMID 15234968, DOI 10.1074/jbc.M406884200, lire en ligne)
  12. (en) Robert E. Labbe, Takao Kurumada et Jinichi Onisawa, « The role of succinyl-CoA synthetase in the control of heme biosynthesis », Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects, vol. 111, no 2,‎ , p. 403-415 (PMID 5879477, DOI 10.1016/0304-4165(65)90050-4, lire en ligne)
  13. (en) J. H. Ottaway, J. A. McClellan et C. L. Saunderson, « Succinic thiokinase and metabolic control », International Journal of Biochemistry, vol. 13, no 4,‎ , p. 401-410 (PMID 6263728, DOI 10.1016/0020-711X(81)90111-7, lire en ligne)
  14. (en) T. M. Jenkins et P. D. Weitzman, « Distinct physiological roles of animal succinate thiokinases Association of guanine nucleotide-linked succinate thiokinase with ketone body utilization », FEBS Letters, vol. 205, no 2,‎ , p. 215-218 (PMID 2943604, DOI 10.1016/0014-5793(86)80900-0, lire en ligne)
  15. (en) S. J. Park, G. Chao et R. P. Gunsalus, « Aerobic regulation of the sucABCD genes of Escherichia coli, which encode alpha-ketoglutarate dehydrogenase and succinyl coenzyme A synthetase: roles of ArcA, Fnr, and the upstream sdhCDAB promoter », Journal of Bacteriology, vol. 179, no 13,‎ , p. 4138-4142 (PMID 9209026, PMCID 179232, lire en ligne)
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