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Vaccinium

Vaccinium, les airelles, est un genre de plantes dicotylédones de la famille des Ericaceae, sous-famille des Vaccinioideae, à répartition quasi-cosmopolite, qui compte environ 450 espèces acceptées.

Airelles

Dans les rĂ©gions tempĂ©rĂ©es, ce sont des sous-arbrisseaux montagnards. Les airelles (du provençal aire, du latin atra : « noire ») sont des petits arbustes de 20 Ă  50 cm de haut, phylogĂ©nĂ©tiquement apparentĂ©s aux bruyères, aux rhododendrons et aux azalĂ©es, Ă  l'arbousier et Ă  la busserole. Le nom vernaculaire, « airelle », dĂ©signe aussi bien la plante que son fruit. Le nom airellier pour dĂ©signer l'arbrisseau est peu usitĂ©.

« Bénin et Lesueur puisèrent de l'eau dans un petit bassin naturel qui se cachait à vingt pas sous les airelliers, et ils y couchèrent les bouteilles de Saint-Péray mousseux, pour les rafraîchir. »

— Jules Romains, Les Copains, 1913, p. 275.

Noms communs : airelle rouge, canneberge, aradeck, atrès, macéret, mourlie, quéquénier, raisin de bruyère ou raisin des bois.

Caractéristiques générales

Les plantes du genre Vaccinium sont de petits arbres ou des arbustes et arbrisseaux, à feuilles persistantes ou caduques. Les feuilles sont alternes, lancéolées, elliptiques, ovales ou arrondies, entières ou dentées[2].

Les fleurs éclosent au printemps et en été, solitaires, à l'aisselle des feuilles, ou en grappes axillaires ou terminales. Ce sont des fleurs actinomorphes à symétrie tétra- ou pentamère, épigynes. Les lobes du calice, au nombre de cinq, sont petits et persistent sur les fruits. La corolle gamopétale, est arrondie à urcéolée-globuleuse, à cinq lobes minuscules à presque libres. Les étamines, au nombre de 8 à 10, ont des anthères qui présentent une corne tubulaire s'ouvrant par un pore terminal. Le pistil comprend un ovaire infère, à 4–5 loges, contenant des ovules peu nombreux, et un style unique[2].

Les fruits sont des baies charnues (ou plus précisément des pseudo baies) souvent sphériques, rouges[2].

Distribution et habitat

Le genre contient environ 450 espèces[3], distribuées dans le monde entier à l'exception de l'Australie et de l'Antarctique. Elle se rencontrent majoritairement sur les pentes montagneuses ouvertes des tropiques, zones où le genre Vaccinium est le plus diversifié. L'Asie du Sud-Est (archipel malais , Nouvelle-Guinée, Inde, Chine et Japon) est à l'origine de près de 40 % des espèces de Vaccinium. Environ 35 % des espèces sont originaires d'Amérique, dont 25 % en Amérique du Nord et 10 % en Amérique du Sud et en Amérique centrale. Le reste, environ 25 %, est largement dispersé dans le monde[4], notamment dans les zones les plus froides de l'hémisphère nord, des régions tempérées jusqu'aux zones circumboréales, mais aussi dans des régions aussi éloignées que Madagascar et Hawaï[5] - [6]. De nouvelles espèces sont encore découvertes dans les Andes[7]. Le genre compte environ 130 espèces endémiques en Nouvelle-Guinée[8].

L'espèce de Vaccinium la plus largement distribuée est probablement Vaccinium uliginosum[4], présente dans toutes les régions tempérées et froides de l'hémisphère nord[9].

Les plantes de ce groupe ont généralement besoin de sols acides (plantes acidophiles) et, à l'état sauvage, elles vivent dans des habitats tels que landes à bruyère, tourbières et forêts acides (par exemple, myrtilles sous chênes ou pins). Les plants de myrtilles et bleuets se trouvent couramment dans les chênaies à bruyères de l'Est de l'Amérique du Nord[10] - [11]. Les plantes du genre Vaccinium se trouvent à la fois dans les sites perturbés (soumis à une succession écologique) et stables, et sont adaptées au feu dans de nombreuses régions, résistant aux incendies de faible intensité et repoussant à partir des rhizomes lorsque les tissus aériens sont brûlés[5].

Espèces courantes

Le genre Vaccinium regroupe plus de 400 espèces, dont les plus répandues sont :

* L'airelle en corymbe donne les baies les plus grosses, ayant facilement cm de diamètre. C'est l'espèce la plus cultivée en Amérique du Nord, particulièrement dans l'est des États-Unis et du Canada.

** L'airelle fausse-myrtille est un arbuste de 30 cm frĂ©quentant les milieux secs au sol grossier ou les lieux humides, tels les tourbières. Elle partage souvent les mĂŞmes habitats avec l'airelle Ă  feuille Ă©troite (Vaccinium angustifolium), avec laquelle elle est souvent confondue. Les fleurs, campanulĂ©es, sont blanches ou rosĂ©es.

Taxinomie

Étymologie

Synonymes

Selon Plants of the World online (POWO) (20 octobre 2020)[2] :

  • Andreusia Dunal
  • Batodendron Nutt.
  • Cavinium Thouars
  • Cyanococcus Rydb.
  • Disiphon Schltr.
  • Epigynium Klotzsch
  • Herpothamnus Small
  • Hornemannia Vahl
  • Hugeria Small
  • Malea Lundell
  • Metagonia Nutt.
  • Myrtillus Gilib.
  • Neojunghuhnia Koord.
  • Oxycoca Raf.
  • Oxycoccoides (Benth. & Hook.f.) Nakai
  • Oxycoccus Hill
  • Peyrusa Rich. ex Dunal
  • Picrococcus Nutt.
  • Polycodium Raf.
  • Ă— Rhodocinium Avrorin
  • Rhodococcum (Rupr.) Avrorin
  • Schollera Roth
  • Symphysia C.Presl
  • Tauschia Preissler
  • Vitis-idaea SĂ©g.

Liste d'espèces

Selon The Plant List (20 octobre 2020)[16] :

  • Vaccinium alaskaense Howell
  • Vaccinium albidens H. LĂ©v. & Vaniot
  • Vaccinium almedae Wilbur & Luteyn
  • Vaccinium altomontanum Ashe
  • Vaccinium amoenum Aiton
  • Vaccinium angustifolium Aiton
  • Vaccinium arboreum Marshall
  • Vaccinium arbutoides C.B. Clarke
  • Vaccinium arctostaphylos L.
  • Vaccinium arcuatum (Ashe) Sleumer
  • Vaccinium ardisioides Hook. f. ex C.B. Clarke
  • Vaccinium arenicola (Ashe) Sleumer
  • Vaccinium arkansanum Ashe
  • Vaccinium atrococcum (A. Gray) A. Heller
  • Vaccinium australe Small
  • Vaccinium bellum (Ashe) Sleumer
  • Vaccinium bocatorense Wilbur
  • Vaccinium boreale I.V. Hall & Aalders
  • Vaccinium brachyandrum C.Y. Wu & R.C. Fang
  • Vaccinium brachybotrys (Franch.) Hand.-Mazz.
  • Vaccinium bracteatum Thunb.
  • Vaccinium breedlovei L.O. Williams
  • Vaccinium brevipedicellatum C.Y. Wu ex W.P. Fang & Z.H. Pan
  • Vaccinium bullatum (Dop) Sleumer
  • Vaccinium bulleyanum (Diels) Sleumer
  • Vaccinium caesariense Mack.
  • Vaccinium caesium Greene
  • Vaccinium caespitosum Michx.
  • Vaccinium calycinum Sm.
  • Vaccinium campanense Wilbur & Luteyn
  • Vaccinium candicans (C. Mohr) Sleumer
  • Vaccinium carlesii Dunn
  • Vaccinium cavinerve C.Y. Wu
  • Vaccinium chaetothrix Sleumer
  • Vaccinium chamaebuxus C.Y. Wu
  • Vaccinium chengiae W.P. Fang
  • Vaccinium chimantense Maguire, Steyerm. & Luteyn
  • Vaccinium chunii Merr. ex Sleumer
  • Vaccinium coccinium Piper
  • Vaccinium conchophyllum Rehder
  • Vaccinium concoloratum (Ashe) Sleumer
  • Vaccinium confertum Kunth
  • Vaccinium consanguineum Klotzsch
  • Vaccinium constablaei A. Gray
  • Vaccinium cordifolium (M. Martens & Galeotti) Hemsl.
  • Vaccinium corymbodendron Dunal
  • Vaccinium corymbosum L.
  • Vaccinium costaricense Wilbur & Luteyn
  • Vaccinium craspedotum Sleumer
  • Vaccinium crassifolium Andrews
  • Vaccinium crassivenium Sleumer
  • Vaccinium crenatum (G.Don) Sleumer
  • Vaccinium cuspidifolium C.Y. Wu & R.C. Fang
  • Vaccinium cylindraceum Sm.
  • Vaccinium darrowii Camp
  • Vaccinium delavayi Franch.
  • Vaccinium deliciosum Piper
  • Vaccinium dendrocharis Hand.-Mazz.
  • Vaccinium dentatum Sm.
  • Vaccinium dependens (G. Don) Sleumer
  • Vaccinium depressum (Small) Sleumer
  • Vaccinium didymanthum Dunal
  • Vaccinium distichum Luteyn
  • Vaccinium duclouxii (H. LĂ©v.) Hand.-Mazz.
  • Vaccinium dunalianum Wight
  • Vaccinium dunnianum Sleumer
  • Vaccinium elliottii Chapm.
  • Vaccinium elvirae Luteyn
  • Vaccinium emarginatum Hayata
  • Vaccinium erythrocarpum Michx.
  • Vaccinium euryanthum A.C.Sm.
  • Vaccinium exaristatum Kurz
  • Vaccinium exul Bolus
  • Vaccinium fasciculatum Bojer ex Dunal
  • Vaccinium fimbribracteatum C.Y. Wu
  • Vaccinium fimbricalyx Chun & W.P. Fang
  • Vaccinium floccosum (L.O.Williams) Wilbur & Luteyn
  • Vaccinium floribundum Kunth
  • Vaccinium floridanum (Nutt.) Sleumer
  • Vaccinium foetidissimum H. LĂ©v. & Vaniot
  • Vaccinium fragile Franch.
  • Vaccinium furfuraceum Wilbur & Luteyn
  • Vaccinium fuscatum Aiton
  • Vaccinium gaultheriifolium (Griff.) Hook. f. ex C.B. Clarke
  • Vaccinium geminiflorum Kunth
  • Vaccinium glandulosum (Ashe) Sleumer
  • Vaccinium glaucoalbum Hook. f. ex C.B. Clarke
  • Vaccinium glaucophyllum C.Y. Wu & R.C. Fang
  • Vaccinium globulare Rydb.
  • Vaccinium guangdongense W.P. Fang & Z.H. Pan
  • Vaccinium haematinum Standl. & Steyerm.
  • Vaccinium hainanense Sleumer
  • Vaccinium haitangense Sleumer
  • Vaccinium harmandianum Dop
  • Vaccinium henryi Hemsl.
  • Vaccinium hirsutum Buckley
  • Vaccinium hirtum Thunb.
  • Vaccinium holophyllum (Small) Uphof
  • Vaccinium hybridum Czerep.
  • Vaccinium impressinerve C.Y. Wu
  • Vaccinium interius (Ashe) Sleumer
  • Vaccinium intermedium Ruthe
  • Vaccinium iteophyllum Hance
  • Vaccinium japonicum Miq.
  • Vaccinium jefense J.L. Luteyn & Wilbur
  • Vaccinium kachinense Brandis
  • Vaccinium kengii C.E. Chang
  • Vaccinium kingdon-wardii Sleumer
  • Vaccinium koreanum Nakai
  • Vaccinium laevigatum Bojer ex Dunal
  • Vaccinium lamarckii Camp
  • Vaccinium lamprophyllum C.Y. Wu & R.C. Fang
  • Vaccinium langloisii (Greene) Cory
  • Vaccinium lanigerum Sleumer
  • Vaccinium latifolium (Griseb.) Benth. & Hook.f. ex B.D.Jacks.
  • Vaccinium lautum (Ashe) Sleumer
  • Vaccinium leptosepalum (Small) Sleumer
  • Vaccinium leucanthum Schltdl.
  • Vaccinium leucobotrys (Nutt.) G. Nicholson
  • Vaccinium liparum (Small) Uphof
  • Vaccinium longicaudatum Chun ex W.P. Fang & Z.H. Pan
  • Vaccinium lundellianum L.O. Williams
  • Vaccinium luteynii Wilbur
  • Vaccinium macilentum (Small) Sleumer
  • Vaccinium macrocarpon Aiton
  • Vaccinium madagascariense (Thouars ex Poir.) Sleumer
  • Vaccinium mandarinorum Diels
  • Vaccinium marianum P. Watson
  • Vaccinium mathewsii Sleumer
  • Vaccinium melanocarpum (C. Mohr) C. Mohr ex Kearney
  • Vaccinium melliflorum (Ruiz & Pav.) F. Muell.
  • Vaccinium membranaceum Douglas ex Torr.
  • Vaccinium meridionale Sw.
  • Vaccinium microcarpum (Turcz. ex Rupr.) Schmalh.
  • Vaccinium minus Vorosch.
  • Vaccinium missouriense (Ashe) Ashe
  • Vaccinium modestum W.W. Sm.
  • Vaccinium monteverdense Wilbur & J.L. Luteyn
  • Vaccinium moupinense Franch.
  • Vaccinium myrsinites Lam.
  • Vaccinium myrtilloides Michx.
  • Vaccinium myrtillus L.
  • Vaccinium neglectum (Small) Fernald
  • Vaccinium nubigenum Fern.
  • Vaccinium nummularia Hook. f. & Thomson ex C.B. Clarke
  • Vaccinium oblongifolium (Michx.) hort. ex Dun
  • Vaccinium oldhamii Miq.
  • Vaccinium oliganthum (Greene) Sleumer
  • Vaccinium omeiensis W.P. Fang
  • Vaccinium orosiense Wilbur & J.L. Luteyn
  • Vaccinium ovalifolium Sm.
  • Vaccinium ovatum Pursh
  • Vaccinium oxycoccos L.
  • Vaccinium pahalae Skottsb.
  • Vaccinium pallidum Aiton
  • Vaccinium palustre Salisb.
  • Vaccinium papillatum P.F. Stevens
  • Vaccinium papulosum C.Y. Wu & R.C. Fang
  • Vaccinium parvifolium Sm.
  • Vaccinium parvum (Ashe) Sleumer
  • Vaccinium peleanum Skottsb.
  • Vaccinium penaeoides Kunth
  • Vaccinium petelotii Merr.
  • Vaccinium pipolyi Luteyn
  • Vaccinium poasanum Donn.Sm.
  • Vaccinium podocarpoideum W.P. Fang & Z.H. Pan
  • Vaccinium pratense P.C. Tam ex C.Y. Wu & R.C. Fang
  • Vaccinium pseudobullatum W.P. Fang & Z.H. Pan
  • Vaccinium pseudocaracasanum Sleumer
  • Vaccinium pseudorobustum Sleumer
  • Vaccinium pseudospadiceum Dop
  • Vaccinium pseudotonkinense Sleumer
  • Vaccinium pterocalyx Luteyn
  • Vaccinium puberulum Klotzsch ex Meisn.
  • Vaccinium pubicalyx Franch.
  • Vaccinium quercinum (Ashe) Sleumer
  • Vaccinium racemosum (Vahl) Wilbur & Luteyn
  • Vaccinium randaiense Hayata
  • Vaccinium retusum (Griff.) Hook. f. ex C.B. Clarke
  • Vaccinium roraimense N.E.Br.
  • Vaccinium rubescens R.C. Fang
  • Vaccinium santafeense Wilbur & J.L. Luteyn
  • Vaccinium saxicolum Chun ex Sleumer
  • Vaccinium sciaphilum C.Y. Wu
  • Vaccinium scoparium Leiberg ex Coville
  • Vaccinium scopulorum W.W. Sm.
  • Vaccinium secundiflorum Hook.
  • Vaccinium secundum Klotzsch
  • Vaccinium selerianum (Loes.) Sleumer
  • Vaccinium sempervirens D.A. Rayner & J. Hend.
  • Vaccinium sericeum (C. Mohr) E.J. Palmer
  • Vaccinium serrulatum W.P. Fang & Z.H. Pan
  • Vaccinium sikkimense C.B. Clarke
  • Vaccinium simulatum Small
  • Vaccinium sinicum Sleumer
  • Vaccinium sphyrospermoides Sleumer
  • Vaccinium spiculatum C.Y. Wu & R.C. Fang
  • Vaccinium sprengelii (G. Don) Sleumer
  • Vaccinium stamineum L.
  • Vaccinium stanleyi Schweinf.
  • Vaccinium stenophyllum Steud.
  • Vaccinium steyermarkii Luteyn
  • Vaccinium subcordatum (Small) Uphof
  • Vaccinium subdissitifolium P.F. Stevens
  • Vaccinium subfalcatum Merr. ex Sleumer
  • Vaccinium supracostatum Hand.-Mazz.
  • Vaccinium talamancense (Wilbur & Luteyn) J.L. Luteyn
  • Vaccinium tallapusae (Coville ex Small) Uphof
  • Vaccinium tenellum Aiton
  • Vaccinium tenuiflorum R.C. Fang
  • Vaccinium trichocladum Merr. & F.P. Metcalf
  • Vaccinium triflorum Rehder
  • Vaccinium truncatocalyx Chun ex W.P. Fang & Z.H. Pan
  • Vaccinium uliginosum L.
  • Vaccinium urceolatum Hemsl.
  • Vaccinium vacciniaceum (Roxb.) Sleumer
  • Vaccinium vacillans Kalm ex Torr.
  • Vaccinium venosum Wight
  • Vaccinium virgatum Aiton
  • Vaccinium vitis-idaea L.
  • Vaccinium wilburii Almeda & Breedlove
  • Vaccinium wrightii A. Gray
  • Vaccinium yaoshanicum Sleumer

Utilisation

Les baies étant comestibles, quelques espèces (notamment Vaccinium angustifolium, Vaccinium corymbosum, Vaccinium macrocarpon, Vaccinium oxycoccos et Vaccinium myrtillus, la myrtille) sont cultivées pour leurs fruits. Les petits fruits produits par ces espèces contiennent de nombreux métabolites végétaux secondaires ayant des activités antioxydantes, anticancéreuses et antidiabétiques, procurant des effets bénéfiques sur la santé[3].

De nombreuses espèces de Vaccinium sont des plantes ornementales très appréciées pour leurs feuilles, fleurs et fruits colorés[17].

Production

Récolte des canneberges, New Jersey, États-Unis
Production en tonnes. Chiffres 2003-2004
Données de FAOSTAT (FAO)
États-Unis 280 50380 %270 00078 %
Canada 52 65115 %53 40016 %
Biélorussie 8 0002 %10 0003 %
Lettonie 8 0002 %8 0002 %
AzerbaĂŻdjan 2 0001 %1 5000 %
Ukraine 1 0000 %1 0000 %
Tunisie 500 %500 %
Turquie 500 %500 %
Total 352 254100 %344 000100 %

Bioaccumulation, radioactivité

On a montrĂ© en Ukraine, notamment après la catastrophe nuclĂ©aire de Tchernobyl, que les airelles et myrtilles et d'autres baies, et leurs feuilles, utilisĂ©es en mĂ©decine traditionnelle se sont montrĂ©es capables de bioaccumulation de certains radionuclĂ©ides[18] - [19] - [20] - [21] - [22], avec toutefois de fortes variations intraspĂ©cifiques (ex : de 2-3 Ă  555 Bq/kg pour l'activitĂ© du strontium 90 (Sr-90) dans les myrtilles fraiches (Vaccinium myrtillus) collectĂ©es dans les pinèdes Ă  myrtilles (Orlov et al., 1996)[23]. Dans les zones contaminĂ©es, en juillet, au moment de la formation, des mesures ont montrĂ© que 31 % de l'activitĂ© radioactive due au cĂ©sium 137 (Cs-137) Ă©tait concentrĂ©e dans les feuilles, 26 % dans les fruits, 25 % dans les pĂ©tioles, et 18 % dans les racines (Korotkova and Orlov, 1999).
Remarque : des contaminations plus Ă©levĂ©es, atteignant 1 028 Bq/kg de Cs-137) sont signalĂ©es chez la canneberge des marais (Oxycoccus palustris[24] - [25]), avec des taux plus Ă©levĂ©s dans les racines.
C'est un motif de prĂ©occupation pour les toxicologues (toxicologie nuclĂ©aire[26]), car les airelles et myrtilles sont une source traditionnelle et importante dans l'alimentation des pays de l'Est et d'Europe centrale ou du nord les plus touchĂ©s par le retombĂ©es de Tchernobyl. Ceci prĂ©occupe aussi les Ă©cotoxicologues et Ă©cologues car de nombreux animaux sauvages s'en nourrissent, pouvant contribuer Ă  une contamination de la chaine alimentaire (rĂ©seau trophique) et du gibier de ces rĂ©gions, avec des consĂ©quences encore mal cernĂ©es (rien que pour l'activitĂ© du Cs-137, des radioactivitĂ©s dĂ©passant 20 000 Bq/kg dans les baies forestières et les champignons, jusqu'Ă  plus de 150 000 Bq/kg dans les champignons secs et 250 000 Bq/kg dans le gibier et 300 000 Bq/kg ont Ă©tĂ© relevĂ©es chez des poissons prĂ©dateurs [26]).

Notes et références

  1. Integrated Taxonomic Information System (ITIS), www.itis.gov, CC0 https://doi.org/10.5066/F7KH0KBK, consulté le 20 octobre 2020
  2. POWO. Plants of the World Online. Facilitated by the Royal Botanic Gardens, Kew. Published on the Internet; http://www.plantsoftheworldonline.org/, consulté le 20 octobre 2020
  3. (en) Nusrat Sultana, Gerhard Menzel, Tony Heitkam, Kenji K. Kojima, Weidong Bao & Sedat Serçe, « Bioinformatic and Molecular Analysis of Satellite Repeat Diversity in Vaccinium Genomes », Genes, vol. 11, no 5,‎ , p. 527 (PMID 32397417, DOI 10.3390/genes11050527, lire en ligne).
  4. (en) Guo-Qing Song, James F. Hancock, « Vaccinium », dans Wild Crop Relatives: Genomic and Breeding Resources, Research Branch / Agriculture Canada, (DOI 10.1007/978-3-642-16057-8_10, lire en ligne), p. 197-221.
  5. (en) Samuel P. Vander Kloet, The Genus Vaccinium in North America, Ottawa (Canada), Research Branch, Agriculture Canada, .
  6. (en) Chie Tsutsumi, « The Phylogenetic Positions of Four Endangered Vaccinium Species in Japan », Bulletin of the National Museum of Nature and Science, vol. 37,‎ , p. 79–86 (lire en ligne).
  7. (en) Paola Pedraza-Peñalosa et James L. Luteyn, « Andean Vaccinium (Ericaceae: Vaccinieae): Seven new species from South America », Brittonia, vol. 63, no 2,‎ , p. 257–275 (ISSN 1938-436X, DOI 10.1007/s12228-010-9164-y).
  8. Frédéric Danet, « Une espèce et une variété nouvelles de Vaccinium (Ericaceae) de Nouvelle-Guinée », Adansonia, Muséum national d’Histoire naturelle, Paris., vol. 27, no 2,‎ , p. 281-285 (lire en ligne).
  9. (en) « Vaccinium uliginosum L. », sur Plants of the World Online (POWO) (consulté le ).
  10. (en) « The Natural Communities of Virginia Classification of Ecological Community Groups (Version 2.3), Virginia Department of Conservation and Recreation, 2010 », sur Virginia.gov (consulté le ).
  11. (en) Schafale, M. P. et Weakley, A. S., Classification of the natural communities of North Carolina: third approximation, North Carolina Natural Heritage Program, North Carolina Division of Parks and Recreation, .
  12. Vaccinium angustifolium sur le site Vascan de Canadensys, consulté le 19 avril 2013
  13. Michel Leboeuf, Arbres et Plantes forestières du Québec et des Maritimes, Éditions Michel Quintin, , 391 p. (ISBN 978-2-89435-331-8), p. 217-218
  14. (en) Jacques André, Les noms des plantes dans la Rome antique, Belles Lettres, , 332 p. (ISBN 978-2-251-32881-2), p. 268.
  15. (en) S. P. Vander Kloet, « On the etymology of Vaccinium L. », Rhodora, vol. 94, no 880,‎ , p. 371-373 (lire en ligne).
  16. The Plant List (2013). Version 1.1. Published on the Internet; http://www.theplantlist.org/, consulté le 20 octobre 2020
  17. « Vaccinium Ornementaux », sur Pépinière Multibaies (consulté le ).
  18. Orlov, A. A. (2001). Accumulation of technogenic radionuclides by wild forest berries and medicinal plants. Chernobyl Digest 1998–2000, 6 (Minsk) (//www.biobel.bas-net.by/igc /ChD/ChD_r.htm) (in Russian)
  19. Orlov, A. A. & Krasnov, V. P. (1997). Cs-137 accumulation intensity under soil cover in quercus and pinequercus forests sugrudoks of Ukrainian Poles’e. In: Problems of Forest Ecology and Forestry in Ukrainian Poles’e. Collection of Scientific Papers (Poles’e Forest Station, Zhytomir) 4: p. 25–30 (in Ukrainian).
  20. Orlov, A. A., Kalish, A. B., Korotkova, E. Z. & Kubers, T. V. (1998). Quantitative estimation of soil characters and intensity of Cs-137 migration in “soil–plant” and “soil–mushroom” chains based on a phytoecological approach. In: Agrochemistry and Pedology (Collection of Papers, Kharkov) 4: p. 169–176 (in Russian).
  21. Orlov, A. A., Krasnov, V. P., Grodzinsky, D. M., Khomlyak, M. N. & Korotkova, E. Z. (1999). Radioecological aspects of using wild medicinal plants: Cs-137 transition from raw materials to watersoluble drugs. In: Problems of Forest and Forestry Ecology in Ukrainian Poles’e (Collection of Scientific Papers, Poles’e Forest Station, Volyn) 6: p. 51–61 (in Russian)
  22. }Orlov, A. A., Krasnov, V. P., Irklienko, S. P. & Turko, V. N. (1996). Investigation of radioactive contaminationof medicinal plants of Ukrainian Poles’e forests.In: Problems of Forest and Forestry Ecology in UkrainianPoles’e. Collection of Papers (Polessk Forest Station, Zhytomir) 3: p. 55–64 (in Ukrainian).
  23. Grodzinsky, D. M. (1999). General situation of the radiologicalconsequences of the Chernobyl accident inUkraine. In: Imanaka, T. (Ed.), Recent Research Activitieson the Chernobyl NPP Accident in Belarus, Ukraine andRussia, KURRI-KR-7 (Kyoto University, Kyoto): p. 18–28
  24. Orlov, A. A. & Krasnov, V. P. (1997). Cs-137 accumulation intensity under soil cover in quercus and pinequercus forests sugrudoks of Ukrainian Poles’e. In: Problems of Forest Ecology and Forestry in Ukrainian Poles’e. Collection of Scientific Papers (Poles’e Forest Station, Zhytomir) 4: p. 25–30 (in Ukrainian).
  25. Krasnov, V. P. & Orlov, A. A. (2006). Actual problems of rehabilitation of radioactively contaminated forests. International Scientific Conference. Twenty Years after Chernobyl Accident: Future Outlook. April 24–26, 2006, Kiev, Ukraine (Contributed Papers, Kiev) 3: p. 321–327 (in Russian).
  26. Nesterenko & Nesterenko: Protective Measures for Activities, Chap 14.2. Radiation Protection Measures for Forestry, Hunting, and Fisheries, p. 313 in Alexei Yablokov, Vassili et Alexei Nesterenko ; Chernobyl ; Consequences of the Catastrophe for People and the Environment ; Annals of the New york Academy of sciences ; Vol. 1181, Consulting editor J.D. sherman-Nevinger ; en anglais, (ISSN 0077-8923) [impression]; (ISSN 1749-6632) [en ligne], 349 pages, PDF, 4,3Mo) et Index des mots clé (39 pages, 165 Ko)

Voir aussi

Articles connexes

Bibliographie

  • (en) Guo-Qing Song, James F. Hancock, « Vaccinium », dans Wild Crop Relatives: Genomic and Breeding Resources, Research Branch / Agriculture Canada, (DOI 10.1007/978-3-642-16057-8_10, lire en ligne), p. 197-221.

Liens externes

Références taxonomiques

Autres

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