Pyruvate phosphate dikinase
La pyruvate, phosphate dikinase est une phosphotransférase qui catalyse la réaction :
IUBMB | Entrée IUBMB |
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IntEnz | Vue IntEnz |
BRENDA | Entrée BRENDA |
KEGG | Entrée KEGG |
MetaCyc | Voie métabolique |
PRIAM | Profil |
PDB | RCSB PDB PDBe PDBj PDBsum |
GO | AmiGO / EGO |
Cette enzyme a été étudiée essentiellement chez les plantes, ainsi que chez certaines bactéries[2].
Le phosphoĂ©nolpyruvate formĂ© est un substrat de la phosphoĂ©nolpyruvate carboxylase qui permet la fixation du dioxyde de carbone CO2 sous forme d'ion bicarbonate HCO3â dans le cadre de la fixation du carbone en C4.
Structure et mécanisme
La forme active de la pyruvate phosphate dikinase est un homotétramÚre d'environ 95 kDa[3].
L'enzyme possĂšde deux centres rĂ©actionnels distants d'environ 4,5 nm auxquels se lient des substrats diffĂ©rents[4]. Le site de liaison au nuclĂ©otide (ATP) se situe du cĂŽtĂ© N-terminal, qui possĂšde 240 rĂ©sidus d'acides aminĂ©s et une configuration caractĂ©ristique des sites de liaison Ă l'ATP. Le site de liaison au pyruvate et au phosphoĂ©nolpyruvate se situe du cĂŽtĂ© C-terminal, constituĂ© de 340 rĂ©sidus d'acides aminĂ©s, et un repliement en hĂ©lices α et tonneau ÎČ. Il possĂšde Ă©galement un domaine central contenant le rĂ©sidu d'His-455, qui joue un rĂŽle central dans la catalyse de la rĂ©action enzymatique. C'est en effet ce rĂ©sidu qui joue le rĂŽle d'accepteur et de donneur de groupe phosphoryle[1]. La structure de l'enzyme suggĂšre que le bras de l'His-455 pivote pour transporter le groupe phosphoryle d'une centre rĂ©actionnel Ă l'autre[5]. Le domaine central pivote d'au moins 92° et se translate de 50 pm au cours de ce mouvement[6].
Des Ă©tudes ont montrĂ© que les mĂ©canismes de liaison de la pyruvate phosphate dikinase sont semblables Ă ceux de la D-alanine-D-alanine ligase (en) et de la pyruvate kinase[5]. La pyruvate phosphate dikinase est notamment trĂšs semblable Ă la pyruvate kinase, qui catalyse Ă©galement la conversion du phosphoĂ©nolpyruvate en pyruvate mais sans passer par un intermĂ©diaire enzymeâphosphate[1]. Bien que ces deux enzymes aient des sĂ©quences diffĂ©rentes, les rĂ©sidus clĂ©s de la catalyse sont prĂ©servĂ©s dans les deux enzymes. Des expĂ©riences par mutation ponctuelle ont montrĂ© que les rĂ©sidus d'Arg-561, d'Arg-617, de Glu-745, d'Asn-768 et de Cys-831 font partie de ces rĂ©sidus conservĂ©s[1].
Le mécanisme réactionnel fait intervenir trois réactions réversibles[7] :
- l'enzyme se lie à l'ATP et l'hydrolyse pour libérer l'AMP en donnant un complexe enzyme-pyrophosphate ;
- le complexe enzyme-pyrophosphate réagit avec le phosphate inorganique pour former un complexe enzyme-phosphate en libérant le pyrophosphate inorganique ;
- le complexe enzyme-phosphate réagit avec le pyruvate pour former le phosphoénolpyruvate en régénérant l'enzyme.
La réaction est semblable à celle catalysée par la pyruvate kinase, qui catalyse cependant une réaction irréversible dans l'autre sens[1].
Fonction biologique et Ă©volution
La pyruvate phosphate dikinase intervient dans la voie mĂ©tabolique de fixation du carbone en C4 en amĂ©liorant l'efficacitĂ© de la fixation du dioxyde de carbone CO2. Ceci peut ĂȘtre rĂ©alisĂ© au moyen d'un ensemble de rĂ©actions transportant le CO2 des cellules du mĂ©sophylle (situĂ©es Ă l'extĂ©rieur des feuilles) aux cellules des gaines pĂ©rivasculaires, situĂ©es Ă l'intĂ©rieur. Cette enzyme convertit le pyruvate en phosphoĂ©nolpyruvate, qui rĂ©agit avec le CO2 pour produire de l'oxaloacĂ©tate. Lorsque le CO2 dans les cellules des gaines pĂ©rivasculaires, le pyruvate est rĂ©gĂ©nĂ©rĂ© et le cycle recommence.
Bien que la rĂ©action catalysĂ©e par la pyruvate phosphate dikinase soit rĂ©versible, c'est la formation de phosphoĂ©nolpyruvate qui est privilĂ©giĂ©e dans les conditions biologiques. Ceci est dĂ» au pH basique dans le stroma des chloroplastes, oĂč se dĂ©roule la rĂ©action, ainsi qu'Ă la forte prĂ©sence d'adĂ©nylate kinase et de pyrophosphatase (en). Dans la mesure oĂč ces deux enzymes catalysent des rĂ©actions exergoniques impliquant respectivement l'AMP et le pyrophosphate, elles orientent les rĂ©actions catalysĂ©es par la pyruvate phosphate dikinase vers le PEP. Cependant, la pyruvate phosphate dikinase consomme de l'ATP, ce qui fait que les plantes en C4 sont dĂ©favorisĂ©es dans les environnements faiblement Ă©clairĂ©s, car alors la photosynthĂšse ne produit pas assez d'ATP.
La pyruvate phosphate dikinase est une enzyme trĂšs abondante dans les feuilles des plantes en C4, oĂč elles peuvent reprĂ©senter jusqu'Ă 10 % du total des protĂ©ines[8]. Des expĂ©riences par hybridation ont montrĂ© que les diffĂ©rences gĂ©nĂ©tiques entre les diffĂ©rences gĂ©nĂ©tiques entre enzymes de diffĂ©rentes origines sont corrĂ©lĂ©es au degrĂ© de prĂ©pondĂ©rance de la fixation du carbone en C4 par rapport Ă la fixation du carbone en C3[9].
La pyruvate phosphate dikinase est présente en petites quantités dans les plantes en C3, et l'histoire de l'évolution suggÚre qu'elle a pu jouer un rÎle dans la glycolyse avant de finalement évoluer en se spécialisant dans la fixation du carbone en C4[8].
RĂ©gulation
La pyruvate phosphate dikinase est rĂ©gulĂ©e par la protĂ©ine de rĂ©gulation de la pyruvate phosphate dikinase (en)[3] (PDRP). Sous forte illumination, cette protĂ©ine dĂ©phosphoryle le rĂ©sidu de Thr-456 de la pyruvate phosphate dikinase, ce qui a pour effet d'activer l'enzyme[8] ; elle l'inactive par phosphorylation sur ce mĂȘme rĂ©sidu Ă partir de pyrophosphate inorganique. La PDRP est une protĂ©ine de rĂ©gulation particuliĂšre en ce qu'elle catalyse Ă la fois l'activation et l'inactivation de la PPDK Ă travers deux mĂ©canismes diffĂ©rents[8].
Notes et références
- (en) Osnat Herzberg, Celia C. H. Chen, Sijiu Liu, Aleksandra Tempczyk, Andrew Howard, Min Wei, Dongmei Ye et Debra Dunaway-Mariano, « Pyruvate Site of Pyruvate Phosphate Dikinase:â Crystal Structure of the EnzymeâPhosphonopyruvate Complex, and Mutant Analysis », Biochemistry, vol. 41, no 3,â , p. 780-787 (PMID 11790099, DOI 10.1021/bi011799+, lire en ligne)
- (en) David J. Pocalyko, Lawrence J. Carroll, Brian M. Martin, Patricia C. Babbitt et Debra Dunaway-Mariano, « Analysis of sequence homologies in plant and bacterial pyruvate phosphate dikinase, enzyme I of the bacterial phospoenolpyruvate:sugar phosphotransferase system and other PEP-utilizing enzymes. Identification of potential catalytic and regulatory motifs », Biochemistry, vol. 29, no 48,â , p. 10757-10765 (PMID 2176881, DOI 10.1021/bi00500a006, lire en ligne)
- (en) Chris J. Chastain, Christopher J. Failing, Lumu Manandhar, Margaret A. Zimmerman, Mitchell M. Lakner et Tony H. T. Nguyen, « Functional evolution of C4 pyruvate, orthophosphate dikinase », Journal of Experimental Botany, vol. 62, no 9,â , p. 3083-3091 (PMID 21414960, DOI 10.1093/jxb/err058, lire en ligne)
- (en) O. Herzberg, C. C. Chen, G. Kapadia, M. McGuire, L. J. Carroll, S. J. Noh et D. Dunaway-Mariano, « Swiveling-domain mechanism for enzymatic phosphotransfer between remote reaction sites », Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, vol. 93, no 7,â , p. 2652-2657 (PMID 8610096, PMCID 39685, DOI 10.1073/pnas.93.7.2652, lire en ligne)
- (en) Kap Lim, Randy J. Read, Celia C. H. Chen, Aleksandra Tempczyk, Min Wei, Dongmei Ye, Chun Wu, Debra Dunaway-Mariano et Osnat Herzberg, « Swiveling Domain Mechanism in Pyruvate Phosphate Dikinase », Biochemistry, vol. 46, no 51,â , p. 14845-14853 (PMID 18052212, DOI 10.1021/bi701848w, lire en ligne)
- (en) Tsugumi Nakanishi, Toru Nakatsu, Makoto Matsuoka, Kanzo Sakata et Hiroaki Kato, « Crystal Structures of Pyruvate Phosphate Dikinase from Maize Revealed an Alternative Conformation in the Swiveling-Domain Motion », Biochemistry, vol. 44, no 4,â , p. 1136-1144 (PMID 15667207, DOI 10.1021/bi0484522, lire en ligne)
- (en) Herbert J. Evans et Harland G. Wood, « The mechanism of the pyruvate, phosphate dikinase reaction », Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, vol. 61, no 4,â , p. 1448-1453 (PMID 4303480, PMCID 225276, DOI 10.1073/pnas.61.4.1448, JSTOR 58792, Bibcode 1968PNAS...61.1448E, lire en ligne)
- (en) Chris J. Chastain, Jason P. Fries, Julie A. Vogel, Christa L. Randklev, Adam P. Vossen, Sharon K. Dittmer, Erin E. Watkins, Lucas J. Fiedler, Sarah A. Wacker, Katherine C. Meinhover, Gautam Sarath et Raymond Chollet, « Pyruvate,Orthophosphate Dikinase in Leaves and Chloroplasts of C3 Plants Undergoes Light-/Dark-Induced Reversible Phosphorylation », Plant Physiology, vol. 128, no 4,â , p. 1368-1378 (PMID 11950985, PMCID 154264, DOI 10.1104/pp.010806, lire en ligne)
- (en) Elke Rosche, Monika Streubel et Peter Westhoff, « Primary structure of the photosynthetic pyruvate orthophosphate dikinase of the C3 plant Flaveria pringlei and expression analysis of pyruvate orthophosphate dikinase sequences in C3, C3âC4 and C4 Flaveria species », Plant Molecular Biology, vol. 26, no 2,â , p. 763-769 (PMID 7948930, DOI 10.1007/BF00013761, lire en ligne)