AccueilđŸ‡«đŸ‡·Chercher

ADN polymérase

Une ADN polymĂ©rase est une enzyme faisant partie du complexe enzymatique intervenant dans la rĂ©plication de l’ADN au cours du cycle cellulaire lors de la phase S, mais aussi dans des processus de rĂ©paration et de recombinaison de l'ADN. Les ADN polymĂ©rases utilisent des dĂ©soxyribonuclĂ©osides triphosphate comme base pour la synthĂšse d'un brin d'ADN, en utilisant un autre brin d'ADN comme matrice. Ce processus rĂ©plicatif utilise la complĂ©mentaritĂ© des bases nuclĂ©iques pour guider la synthĂšse du nouveau brin Ă  partir du brin matrice. Il existe plusieurs familles de polymĂ©rases, qui diffĂšrent selon leur sĂ©quence en acides aminĂ©s et leurs propriĂ©tĂ©s catalytiques.

ADN polymérase
Description de cette image, également commentée ci-aprÚs
Structure 3D du motif de liaison Ă  l'ADN helix-hairpin-helix de l'ADN polymĂ©rase humaine ÎČ
N° EC EC 2.7.7.7
N° CAS 9012-90-2
La réplication de l'ADN par une ADN polymérase.

MĂ©canisme

DĂ©marrage

Toutes les ADN polymĂ©rases synthĂ©tisent l’ADN dans le sens 5’ → 3’, chez tous les organismes vivants, et aucune n’est capable de commencer la synthĂšse d'un brin de novo. Elles ne peuvent qu'ajouter des nuclĂ©otides Ă  une extrĂ©mitĂ© hydroxyle libre, en gĂ©nĂ©ral le 3’-OH du brin en cours de synthĂšse. Pour cette raison, l'ADN polymĂ©rase a besoin d’une amorce (ou primer), sur laquelle ajouter de nouveaux dĂ©soxyribonuclĂ©otides.

L’amorce peut ĂȘtre formĂ©e d’ADN ou d’ARN. Dans le cas de la rĂ©plication, l'amorce constituĂ©e d'ARN est synthĂ©tisĂ©e par une autre enzyme, appelĂ©e primase, au sein du complexe de rĂ©plication appelĂ© rĂ©plisome. Celui-ci contient Ă©galement une enzyme, l'hĂ©licase, qui est nĂ©cessaire pour sĂ©parer les deux brins de l’ADN et ainsi permettre l’accĂšs des ADN polymĂ©rases et la rĂ©plication. Dans le cas des processus de rĂ©paration et de recombinaison, l'amorce est constituĂ©e d'un segment d'ADN rĂ©sultant de la coupure par une endonuclĂ©ase du brin endommagĂ© ou recombinĂ©, qui libĂšre une extrĂ©mitĂ© 3’-OH libre.

Élongation et processivitĂ©

Les diverses ADN polymĂ©rases se diffĂ©rencient par leur capacitĂ© Ă  allonger l'ADN sans se dissocier du brin matrice, une caractĂ©ristique qui s'appelle la processivitĂ©. Certaines ADN polymĂ©rases sont faiblement associĂ©es Ă  leur substrat et se dĂ©tachent aprĂšs avoir polymĂ©risĂ© seulement quelques nuclĂ©otides. On parle alors d'ADN polymĂ©rases distributives, ce qui est une caractĂ©ristique de beaucoup de polymĂ©rases impliquĂ©es dans les processus de rĂ©paration. Les ADN polymĂ©rases rĂ©plicatives, au contraire, sont trĂšs fortement liĂ©es au brin matrice et ne se dissocient pas. Elles peuvent polymĂ©riser plusieurs centaines de milliers de nuclĂ©otides en une seule fois. On parle alors d'ADN polymĂ©rases processives. Un cofacteur protĂ©ique, la pince (ou clamp), appelĂ© PCNA chez les eucaryotes et les archĂ©es, et complexe ÎČ chez les bactĂ©ries, se lie aux polymĂ©rases rĂ©plicatives et augmente considĂ©rablement leur processivitĂ©.

L'activitĂ© des ADN polymĂ©rases nĂ©cessite la prĂ©sence d’ions Mg2+ comme cofacteurs qui se fixent en particulier sur les groupes phosphate des nuclĂ©otides et de l'ADN.

Fidélité et activité de relecture

Certaines ADN polymĂ©rases, qui disposent aussi d'une activitĂ© exonuclĂ©ase 3’ → 5’, ont la capacitĂ© de corriger les erreurs d'incorporation dans le brin nĂ©oformĂ©. Lorsque l'ADN polymĂ©rase fait une erreur et qu'un mĂ©sappariement est formĂ© au niveau du site actif de l'enzyme, celle-ci peut revenir en arriĂšre et hydrolyser le nuclĂ©otide incorrect : c'est l’activitĂ© exonuclĂ©ase 3’-5’, appelĂ©e Ă©galement fonction d'Ă©dition. Elle peut alors rĂ©insĂ©rer la base correcte, et reprendre la rĂ©plication. Ce processus de relecture par l'ADN polymĂ©rase amĂ©liore la fidĂ©litĂ© du processus rĂ©plicatif et fait baisser le taux d'erreur.

Au contraire, certaines ADN polymérases sont peu fidÚles et font des erreurs d'incorporation de nucléotides avec une fréquence plus élevée. Ces ADN polymérases sont utilisées spécifiquement dans les processus de réparation de l'ADN. Leur spécificité relùchée leur permet de répliquer de l'ADN contenant des lésions, c'est-à-dire des bases altérées par des modifications chimiques, résultant par exemple de l'action de rayonnement UV, ionisant ou d'agents mutagÚnes. On parle d'ADN polymérases translésionnelles.

On parle également d'une fonction de correction d'épreuves ou de correction sur épreuves (« proofreading » en anglais) des ADN polymérases.

ADN polymérases chez les procaryotes

Cinq ADN polymérases ont été identifiées chez les procaryotes :

  • Pol I : impliquĂ©e dans la rĂ©paration et la rĂ©plication de l’ADN. Elle possĂšde une activitĂ© polymĂ©rase 5’ → 3’, une activitĂ© exonuclĂ©ase 3’ → 5’ pour la relecture, et enfin une activitĂ© exonuclĂ©ase 5’ - 3’ qui lui permet d'Ă©liminer les amorces d'ARN des fragments d'Okazaki pendant la rĂ©plication. Son activitĂ© polymĂ©rase lui permet de synthĂ©tiser de l'ADN destinĂ© Ă  ĂȘtre immĂ©diatement suturĂ© par une ADN ligase.
La Pol I est peu processive et se dissocie de la matrice aprÚs l'ajout d'une vingtaine de nucléotides.
En biologie molĂ©culaire, seule une partie de la protĂ©ine, appelĂ©e fragment de Klenow, est employĂ©e. Ce fragment contient l'activitĂ© polymĂ©rase 5’ → 3’ et l'activitĂ© exonuclĂ©ase 3’ → 5’.
  • Pol II : impliquĂ©e dans la rĂ©plication de l'ADN endommagĂ©, elle possĂšde une activitĂ© polymĂ©rase 5’ → 3’ et une activitĂ© exonuclĂ©ase 3’ → 5’.
La Pol II est peu processive.
  • Pol III : c’est la principale polymĂ©rase, qui intervient dans l'Ă©longation de la chaĂźne d'ADN lors de la rĂ©plication au niveau du brin avancĂ© et de la synthĂšse des fragments d’Okazaki. Elle est formĂ©e de trois sous-unitĂ©s qui en constituent l'holoenzyme :
    • la sous-unitĂ© α (alpha) possĂšde l'activitĂ© polymĂ©rase 5’ → 3’,
    • la sous-unitĂ© Δ (epsilon) possĂšde l'activitĂ© exonuclĂ©ase 3’ → 5’, et
    • la sous-unitĂ© Ξ (thĂȘta) stimule l'activitĂ© de « proofreading » de la prĂ©cĂ©dente.
  • Cette holoenzyme forme le noyau d'un rĂ©plisome constituĂ© en tout de dix protĂ©ines :
    • deux holoenzymes de polymĂ©rase III,
    • deux unitĂ©s ÎČ (bĂȘta) agissant comme pince Ă  ADN (clamp),
    • deux unitĂ©s τ (tau) permettant de dimĂ©riser l'holoenzyme de polymĂ©rase III,
    • une unitĂ© Îł (gamma) dite chargeur de clamp elle-mĂȘme constituĂ©e de trois sous-unitĂ©s Îł proprement dites, une sous-unitĂ© ÎŽ (delta) et une sous-unitĂ© ή’ (delta prime), et enfin
    • une unitĂ© Χ (Khi) et une unitĂ© Κ (Psi) formant un complexe 1:1 qui se lie Ă  l'unitĂ© τ ou Ă  l'unitĂ© Îł.
Pendant la rĂ©plication, le complexe Îł se place Ă  l'ouverture de la fourche de rĂ©plication en contact avec l'hĂ©licase. Il dĂ©place les sous-unitĂ©s ÎČ (appelĂ©es aussi clamp bĂȘta) autour de chaque brin d'ADN matrice comme des pinces pour permettre Ă  l'holoenzyme qui lui est liĂ©e de glisser sur le brin matrice. De plus, le complexe Îł est liĂ© aux deux unitĂ©s τ elles-mĂȘmes liĂ©es aux deux sous-unitĂ©s α des holoenzymes.
La Pol III est trĂšs processive.
  • Pol IV : ADN polymĂ©rase de la famille Y.
  • Pol V : ADN polymĂ©rase de la famille Y.

ADN polymérases chez les eucaryotes

  • Pol α (alpha) : Ă  la suite des amorces d'ARN synthĂ©tisĂ©es par la primase lors de l'initiation, Pol α synthĂ©tise de courtes sĂ©quences d'ADN d'une vingtaine de nuclĂ©otides de long. Cette polymĂ©rase ne possĂšde pas de fonction exonuclĂ©asique 3’ → 5’. Elle est associĂ©e en un complexe avec la primase responsable de la synthĂšse de l'amorce d'ARN[1].
  • Pol ÎČ (bĂȘta) : cette polymĂ©rase est impliquĂ©e dans des processus de rĂ©paration de l'ADN. Elle ne possĂšde pas de fonction exonuclĂ©asique. Elle correspond Ă  la Pol II bactĂ©rienne.
  • Pol ÎŽ (delta) : c'est la polymĂ©rase principale qui intervient dans la rĂ©plication de l'ADN chez les eucaryotes, avec l'ADN Pol Δ, dans la synthĂšse du brin avancĂ© et du brin retardĂ©. Elle possĂšde aussi une activitĂ© exonuclĂ©asique 3' vers 5' intervenant dans la correction des erreurs et dans des processus de rĂ©paration. La polymĂ©rase ÎŽ est hautement processive lorsqu'elle est associĂ©e au PCNA. Cette polymĂ©rase correspond Ă  la Pol III bactĂ©rienne.
  • Pol Δ (epsilon) : elle possĂšde une activitĂ© polymĂ©rase 5’ → 3’ et une activitĂ© exonuclĂ©ase 3’ → 5’ et intervient dans la rĂ©plication et la rĂ©paration de l'ADN. Elle lit dans le sens 3’ → 5’ et synthĂ©tise 5’ → 3’ la zone du tĂ©lomĂšre qui ne peut ĂȘtre synthĂ©tisĂ©e par la Pol ÎŽ (une amorce prĂ©alable doit ĂȘtre posĂ©e par la primase sur l'extrĂ©mitĂ© 3’ allongĂ©e du tĂ©lomĂšre). Une ligase rĂ©alise ensuite la suture entre les deux brins.
  • Pol ζ (zĂȘta) : polymĂ©rase de la famille B.
  • Pol η (ĂȘta) : polymĂ©rase de la famille Y.
  • Pol Ξ (thĂȘta) : polymĂ©rase de la famille A. Une rĂ©cente publication indique que si elle ne fait pas une excellente transcriptase, elle est capable d'effectuer une rĂ©trotranscription[2].
  • Pol Îč (iota) : polymĂ©rase de la famille Y.
  • Pol Îș (kappa) : polymĂ©rase de la famille Y.
  • Rev1 : polymĂ©rase de la famille Y.

ADN polymérases chez les archées

  • PolymĂ©rase B : toutes les ADN polymĂ©rases de type B identifiĂ©es chez les archĂ©es prĂ©sentent une activitĂ© polymĂ©rase 5’ → 3’ et une activitĂ© exonuclĂ©ase 3’ → 5’. Elles sont constituĂ©es d'une seule sous-unitĂ©.
  • PolymĂ©rase D : ces ADN polymĂ©rases trouvĂ©es chez les Euryarchaeota sont constituĂ©es de deux sous-unitĂ©s diffĂ©rentes. La grande sous-unitĂ© DP2 possĂšde l'activitĂ© catalytique, mais seulement en prĂ©sence de la petite sous-unitĂ© DP1.

Familles d'ADN polymérases

Sur la base d’homologie de sĂ©quence protĂ©ique et de structure, les polymĂ©rases peuvent ĂȘtre divisĂ©es en diffĂ©rentes familles : A, B, C, D, X, Y et RT.

Famille A

Les polymĂ©rases de la famille A contiennent des polymĂ©rases rĂ©plicatives et des polymĂ©rases de rĂ©paration. Les polymĂ©rases rĂ©plicatives de cette famille comprennent notamment la polymĂ©rase du bactĂ©riophage T7 et l’ADN polymĂ©rase gamma des eucaryotes. Parmi les ADN polymĂ©rases de rĂ©paration, on peut trouver l’ADN polymĂ©rase I d'E. coli, de Thermus aquaticus et de Bacillus stearothermophilus. Ces polymĂ©rases de rĂ©paration sont impliquĂ©es dans des processus de rĂ©paration par excision de base et dans la synthĂšse des fragments d’Okazaki du brin retardĂ© lors de la rĂ©plication.

Famille B

Cette famille regroupe essentiellement des ADN polymĂ©rases rĂ©plicatives et comprend les ADN polymĂ©rases Pol α, Pol ÎŽ et Pol Δ des eucaryotes. Une ADN polymĂ©rase de la famille B a Ă©tĂ© identifiĂ©e chez toutes les espĂšces d’archĂ©es examinĂ©es. La famille B contient Ă©galement des ADN polymĂ©rases provenant de bactĂ©ries et de bactĂ©riophages, dont les mieux caractĂ©risĂ©es sont celles des phages T4 et RB69. Ces enzymes sont impliquĂ©es dans la synthĂšse du brin avancĂ© et du brin retardĂ©.

Famille C

Les ADN polymĂ©rases de cette famille ont Ă©tĂ© isolĂ©es chez des bactĂ©ries. Elles possĂšdent aussi une activitĂ© exonuclĂ©ase 5’ → 3’.

Famille D

Les ADN polymérases de la famille D restent encore peu caractérisées et ont été trouvées uniquement chez des Euryarchaeota, un embranchement (phylum) du rÚgne des archées.

Famille X

La famille X comprend l'ADN polymĂ©rase ÎČ bien caractĂ©risĂ©e chez les eucaryotes et d'autres ADN polymĂ©rases comme la Pol σ, la Pol λ, et la Pol ÎŒ. L'ADN polymĂ©rase ÎČ est nĂ©cessaire au processus de rĂ©paration de l'ADN appelĂ© BER (rĂ©paration par excision de base). La Pol λ et la Pol ÎŒ interviennent dans des processus de rĂ©paration de l'ADN impliquant des cassures doubles brins.

Famille Y

Les polymĂ©rases de la famille Y sont caractĂ©risĂ©es par leur capacitĂ© Ă  tolĂ©rer des lĂ©sions de l’ADN lors de la rĂ©plication. Elles sont appelĂ©es polymĂ©rases de translĂ©sion (TLS pour translesion sythesis polymerases). Elles ne possĂšdent pas de fonction exonuclĂ©ase 3’ → 5’. Leur fidĂ©litĂ© lors de la synthĂšse d’ADN est faible, mĂȘme en absence d’ADN endommagĂ©.

Famille RT

La famille des transcriptases inverses comprend des ADN polymĂ©rases de rĂ©trovirus et d’eucaryotes. Ces polymĂ©rases sont capables de synthĂ©tiser de l’ADN Ă  partir d’une matrice d'ARN.

La polymĂ©rase thĂȘta pourrait ĂȘtre capable d'effectuer une rĂ©trotranscriptase[2].

Bibliographie

  • Garg, P. et P. M. Burgers. 2005. DNA polymerases that propagate the eukaryotic DNA replication fork. Crit Rev Biochem Mol Biol 40:115-28.
  • Hubscher, U., G. Maga, et S. Spadari. 2002. Eukaryotic DNA polymerases. Annu Rev Biochem 71:133-63.
  • Kelman, Z. 2000. DNA Replication in the Third Domain (of Life). Current Protein and Peptide Science 1:139-154.
  • Johnson, A., and M. O'Donnell. 2005. Cellular DNA replicases: components and dynamics at the replication fork. Annu Rev Biochem 74:283-315.
  • Nohmi, T. 2006. Environmental Stress and Lesion-Bypass DNA Polymerases. Annu Rev Microbiol.

Voir aussi

Articles connexes

Notes et références

  1. (en) Marco Muzi-Falconi, Michele Giannattasio, Marco Foiani et Paolo Plevani, « The DNA Polymerase α-Primase Complex: Multiple Functions and Interactions », The Scientific World, vol. 3,‎ (ISSN 1537-744X, DOI 10.1100/tsw.2003.05, lire en ligne, consultĂ© le )
  2. (en) Gurushankar Chandramouly, Jiemin Zhao, Shane McDevitt et Timur Rusanov, « PolΞ reverse transcribes RNA and promotes RNA-templated DNA repair », Science Advances, vol. 7, no 24,‎ , eabf1771 (ISSN 2375-2548, PMID 34117057, DOI 10.1126/sciadv.abf1771, lire en ligne, consultĂ© le )
Cet article est issu de wikipedia. Text licence: CC BY-SA 4.0, Des conditions supplĂ©mentaires peuvent s’appliquer aux fichiers multimĂ©dias.