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Rhodopseudomonas palustris

Rhodopseudomonas palustris est au sein du vaste groupe des protéobactéries une bactérie Gram négatif, du sous-groupe groupe des bactéries pourpres non sulfureuses et de la famille des Bradyrhizobiaceae.

Rhodopseudomonas palustris
Description de l'image Defaut 2.svg.
Classification
Règne Bacteria
Division Proteobacteria
Classe Alpha protéobactéries
Ordre Rhizobiales
Famille Bradyrhizobiaceae
Genre Rhodopseudomonas

Espèce

Rhodopseudomonas palustris
(Molisch (d) 1907[1]) van Niel 1944[2]
(Approved Lists 1980)

Elle a Ă©tĂ© remarquĂ©e par sa capacitĂ© Ă  basculer entre quatre types diffĂ©rents de mĂ©tabolismes. cette « polyvalence mĂ©tabolique Â» a suscitĂ© l'intĂ©rĂŞt de nombreux domaines de la recherche et a fait de cette bactĂ©rie une espèce modèle. Elle intĂ©resse aussi l’industrie des biotechnologies. Ses larges capacitĂ©s d'adaptation pourraient cependant peut-ĂŞtre dans certaines conditions lui confĂ©rer les caractĂ©ristiques d'une espèce invasive.

Son génome a été séquencé.

Habitat

R. palustris a été trouvée dans des bassins de lisiers de porcs (où elle pourrait être utilisée pour réduire leur mauvaises odeurs[3]), des tourillons de vers de terre et dans les sédiments marins ou d'eau stagnante.

MĂ©tabolisme original

Bien que les bactéries pourpres non sulfureuses soient normalement photohétérotrophes, R. palustris a la possibilité de basculer entre les quatre grands modes de métabolisme connus :

  1. photoautotrophie,
  2. photohétérotrophie,
  3. chemoautotrophie
  4. chemohétérotrophie.

Autrement dit, elle peut se développer avec ou sans oxygène, avec ou sans la lumière (ce qui pourrait être une des adaptations inhabituelles du vivant au rythme circadien[4]) et tirer de l'énergie de composés inorganiques ou organiques. Elle peut acquérir son carbone, soit de la fixation du dioxyde de carbone dissous dans l'eau, soit de composés organiques. Elle peut également fixer l'azote.

Biologie et génomique

Des efforts sont déployés pour mieux comprendre comment cet organisme intègre les différents modes métaboliques et bascule de l'un à l'autre en réponse à certains changements environnementaux ou à d'autres stimuli.

Un des moyens de le comprendre est de décrypter le fonctionnement génétique de cette bactérie, ce qui a conduit les généticiens à séquencer entièrement le génome de Rhodopseudomonas palustris CGA009 (Liste des génomes bactériens séquencés), dans l'espoir d'obtenir des informations pertinentes sur les mécanismes moléculaires permettant à cette bactérie de "percevoir" son environnement (lumineux notamment[5]) et pour comprendre comment l'environnement modifie ses voies métaboliques[6].

Il a ainsi pu être constaté que R. palustris possède des gènes qui codent des protéines composant une antenne collectrice, construction pigmentaire et protéique associée à la chlorophylle habituellement trouvée dans la membrane des thylakoïdes.

Elle possède aussi des gènes codant des centres réactionnels.

Ces deux structures sont généralement présentes chez des organismes photosynthétiques plus évolués comme les plantes vertes.

En plus d'être une bactérie photosynthétique, R. palustris peut moduler sa photosynthèse en fonction de la quantité de lumière disponible. Par exemple dans la pénombre, elle réagit en augmentant le nombre des structures internes qui lui servent de collecteurs de lumière et augmente ainsi son métabolisme.

R. palustris dispose également de gènes codant la protéine Rubisco. Cette enzyme est nécessaire à la fixation du dioxyde de carbone. C'est elle qui permet la fixation du carbone chez les plantes et d'autres organismes photosynthétiques, ce qui leur permet de contribuer aux puits de carbone.

L'analyse de ce génome a aussi révélé des protéines impliquées dans fixation de l'azote (voir Diazotrophie).

Applications possibles (transgenèse, biotechnologies…)

Le génome des bactéries pourpres phototrophiques semblent d'un grand intérêt pour plusieurs applications biotechnologiques ; Ces bactéries peuvent ou pourraient être en effet et par exemple être utilisées pour :

  • la production de « bioplastiques» synthĂ©tiques ;
  • la bioremĂ©diation (dĂ©pollution de certains sols polluĂ©s par des hydrocarbures aromatiques par exemple prĂ©sents dans des dĂ©chets agricoles et/ou industriels ;
  • une bioproduction industrielle d'hydrogène comme biocarburant ou produit utilisable pour des piles Ă  hydrogène, car R. palustris prĂ©sente aussi la caractĂ©ristique (Ă  ce jour unique) de codage d’une enzyme (vanadium nitrogĂ©nase, ainsi nommĂ©e car contenant du vanadium), qui produit (comme sous-produit de la fixation de l'azote) trois fois plus d'hydrogène que la nitrogĂ©nase d'autres bactĂ©ries.

Produire un OGM stable et sécurisé à partir de cette bactérie, pour par exemple produire de manière rentable de l'hydrogène, implique cependant de s'assurer qu'une telle bactérie ne serait pas dangereuse dans la nature si elle s'y échappe, et d'avoir une connaissance plus détaillée de ses voies et fonctions métaboliques et de leurs mécanismes de contrôle et régulation[6].

Références

  1. Hans Molisch, Die purpurbakterien : nach neuen untersuchungen; eine mikrobiologische studie /, Fischer,, (DOI 10.5962/bhl.title.115708, lire en ligne)
  2. (en) C. B. van Niel, « The Culture, General Physiology, Morphology, and Classification of the Non-Sulfur Purple and Brown Bacteria », Microbiology and Molecular Biology Reviews, vol. 8, no 1,‎ , p. 1–118 (ISSN 1092-2172 et 1098-5557, PMID 16350090, lire en ligne, consulté le )
  3. Do, Y.S. et al. Role of Rhodobacter sp. strain PS9, a purple non-sulfur photosynthetic bacterium isolated from an anaerobic swine waste lagoon, in odor remediation. Appl. Environ. Microbiol. 69, 1710–1720 (2003).
  4. Johnson, C.H. & Golden, S.S. (1999), Circadian programs in cyanobacteria: adaptiveness and mechanism. Annu. Rev. Microbiol. 53, 389–409
  5. Gall, A. & Robert, B. Characterization of the different peripheral light-harvesting complexes from high- and low-light grown cells from Rhodopseudomonas palustris. Biochemistry 38, 5185–5190
  6. Larimer et al. (2004), Complete genome sequence of the metabolically versatile photosynthetic bacterium Rhodopseudomonas palustris CGA009 ("Séquence complète du génome de la bactérie photosynthétique métaboliquement polyvalente 'Rhodopseudomonas palustris' Nature Biotechnology ; Nature Biotechnology, 22:55 ; doi:10.1038/nbt923 (résumé)

Bibliographie

  • (en) Rolls, J.P. & Lindstrom, E.S. (1967), Effect of thiosulfate on the photosynthetic growth of Rhodopseudomonas palustris. J. Bacteriol. 94, 860–869
  • (en) McGrath, J.E. & Harfoot, C.G.(1997), Reductive dehalogenation of halocarboxylic acids by the phototrophic genera Rhodospirillum and Rhodopseudomonas. Appl. Environ. Microbiol. 63, 3333–3335 .
  • (en) Egland, P.G., Gibson, J. & Harwood, C.S. (2001), Reductive, coenzyme A–mediated pathway for 3–chlorobenzoate degradation in the phototrophic bacterium Rhodopseudomonas palustris. Appl. Environ. Microbiol. 67, 1396–1399
  • (en) Noh, U., Heck, S., Giffhorn, F. & Kohring, G.W. (2002), Phototrophic transformation of phenol to 4-hydroxyphenylacetate by Rhodopseudomonas palustris. Appl. Microbiol. Biotechnol. 58, 830–835
  • (en) Lang, A.S. & Beatty, J.T. (2001), The gene transfer agent of Rhodobacter capsulatus and "constitutive transduction" in prokaryotes. Arch. Microbiol. 175, 241–249 (2001)
  • (en) Schaefer, A.L., Taylor, T.A., Beatty, J.T. & Greenberg, E.P.(2002), Long-chain acyl-homoserine lactone quorum-sensing regulation of Rhodobacter capsulatus gene transfer agent production. J. Bacteriol. 184, 6515–6521 (2002).
  • (en) Chun-Ting Zhang & Ren Zhang (2004), Genomic islands in Rhodopseudomonas palustris ; Nature Biotechnology 22, 1078 - 1079 ; doi:10.1038/nbt0904-1078b (rĂ©sumĂ©)
  • (en) http://www.nature.com/nbt/journal/v22/n1/abs/nbt923.html

Liens externes

Center for Bioinformatcs and Computational Genomics, Rodopseudomonas palustris

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