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Trogocytose

Trogocytose (grec moderne : trogo ; ronger) est le fait pour une cellule de grignoter une autre cellule[1]. Il s'agit d'un processus par lequel des lymphocytes (cellules B, T et NK) conjugués à des cellules présentatrices d'antigÚne extraient des molécules de surface de ces cellules et les expriment à leur propre surface[2]. La réorganisation moléculaire se produisant à l'interface entre le lymphocyte et la cellule présentatrice d'antigÚne lors de la conjugaison est également appelée « synapse immunologique ».

Reconstruction volumĂ©trique Ă  partir de coupes confocales d'une interface cellule Ramos-RAW. Des cellules Ramos (rouges) recouvertes de RTX-Al488 (vert) et marquĂ©es au PKH26 sont incubĂ©es avec des cellules RAW pendant 45 minutes Ă  37°C. Les cellules RAW sont marquĂ©es avec l'anti-CD11b-APC (cyan). La cellule RAW a largement trogocytosĂ© Ă  la fois RTX et PKH26. L'encart montre la zone en pointillĂ© au-dessus de la cellule sans le canal PKH26, rĂ©vĂ©lant la concentration de RTX-Al488 Ă  l'interface cellule-cellule, autrement appauvrie par rapport au reste de la cellule Ramos. La rĂ©action de trogocytose est arrĂȘtĂ©e par la fixation 45 min aprĂšs la coĂŻncubation. Les cellules de Ramos ont un diamĂštre d'environ 12 ÎŒm.

Étapes de la dĂ©couverte de la trogocytose

La premiĂšre indication de l'existence de ce processus remonte Ă  la fin des annĂ©es 70, lorsque plusieurs groupes de recherche ont signalĂ© la prĂ©sence de molĂ©cules inattendues telles que les molĂ©cules du complexe majeur d'histocompatibilitĂ© (CMH) sur les cellules T. L'idĂ©e que des fragments de membrane, et non des molĂ©cules isolĂ©es, pouvaient ĂȘtre capturĂ©s par les cellules T sur les cellules prĂ©sentatrices d'antigĂšnes est suggĂ©rĂ©e par la capture de molĂ©cules du CMH fusionnĂ©es Ă  la protĂ©ine fluorescente verte (GFP) dans leur partie intracellulaire[3]. La dĂ©monstration de l'implication de fragments membranaires dans ce processus de transfert est apportĂ©e lorsque des sondes fluorescentes incorporĂ©es dans la membrane plasmique de la cellule prĂ©sentatrice d'antigĂšne ainsi que des molĂ©cules non CMH sont capturĂ©es par les cellules T en mĂȘme temps que l'antigĂšne[4] - [5].

Types de cellules réalisant une trogocytose

La trogocytose est initialement documentée dans les cellules T, B et NK à la fois in vivo et in vitro. Sur les cellules T et les cellules B, la trogocytose est déclenchée lorsque le récepteur des cellules T (TCR) sur les cellules T ou le récepteur des cellules B (BCR) sur les cellules B interagit avec l'antigÚne reconnu sur les cellules présentatrices d'antigÚne. Comme pour les lymphocytes, la trogocytose se produit avec les PMN (leucocytes polymorphonucléaires, également appelés granulocytes) et est associée à une ADCC efficace (cytotoxicité à médiation cellulaire dépendante des anticorps).

Il est démontré que pour initier l'ADCC in vitro, les PMN doivent adhérer à leurs cellules cibles et former des jonctions serrées avec les cellules tumorales opsonisées par les anticorps. Ce regroupement cellulaire précÚde l'échange mutuel de lipides membranaires entre l'effecteur et la cellule cible pendant l'ADCC et ne se produit pas en l'absence d'anticorps opsonisants[6]. La trogocytose se produit également dans les monocytes et les cellules dendritiques. En dehors du systÚme immunitaire, des transferts similaires de fragments membranaires sont documentés entre les spermatozoïdes et les ovocytes, un processus dont on pense qu'il contribue à la fusion des gamÚtes[7].

DerniÚrement, le terme est attribué aux macrophages, tels que les microglies résidant dans le SNC, qui sont capables d'éliminer partiellement de petites portions d'axones neuronaux au cours du développement postnatal[8].

MĂ©canismes de la trogocytose

La trogocytose implique le transfert de fragments de la membrane plasmique de la cellule prĂ©sentatrice au lymphocyte. La trogocytose est spĂ©cifiquement dĂ©clenchĂ©e par la signalisation des rĂ©cepteurs de l'antigĂšne sur les cellules T et B, par les rĂ©cepteurs inhibiteurs et activateurs des tueurs sur les cellules NK et par divers rĂ©cepteurs sur d'autres cellules, y compris le rĂ©cepteur Fc et le rĂ©cepteur de classe A du scavenger. Il est probable que la trogocytose n'implique pas la capture de vĂ©sicules telles que les exosomes sĂ©crĂ©tĂ©s par les cellules prĂ©sentatrices d'antigĂšnes. Au contraire, les molĂ©cules pourraient passer des cellules prĂ©sentatrices d'antigĂšnes aux lymphocytes, transportĂ©es par des nanotubes membranaires, ou des fragments de membrane pourraient ĂȘtre dĂ©chirĂ©s par les cellules T en raison des forces physiques nĂ©cessaires Ă  la formation et Ă  la dĂ©formation des synapses immunologiques. Selon les deux types de cellules impliquĂ©es dans les conjugaisons, la trogocytose peut ĂȘtre unidirectionnelle ou bidirectionnelle. Les protĂ©ines transfĂ©rĂ©es par trogocytose sont nombreuses et comprennent principalement des protĂ©ines insĂ©rĂ©es dans la membrane plasmique ou Ă©troitement associĂ©es Ă  celle-ci (protĂ©ines couvrant la bicouche lipidique ou insĂ©rĂ©es dans les feuillets extracellulaires ou intracellulaires). Par exemple, il est rĂ©cemment dĂ©montrĂ© que les lymphocytes humains acquiĂšrent la protĂ©ine de la membrane interne H-Ras, une protĂ©ine G vitale pour les fonctions lymphocytaires courantes et un acteur de premier plan dans le cancer humain, Ă  partir des cellules qu'ils scannent[9]. Le transfert dĂ©pendait du contact cellulaire et s'est produit dans le contexte de la formation de conjuguĂ©s cellulaires. De plus, l'acquisition de H-RasG12V oncogĂšne par les lymphocytes NK et T avait des fonctions biologiques importantes dans les lymphocytes adoptants : la phosphorylation de ERK induite par le H-RasG12V transfĂ©rĂ©, une sĂ©crĂ©tion accrue d'interfĂ©ron-Îł et de facteur de nĂ©crose tumorale-α, une prolifĂ©ration lymphocytaire accrue et augmentation de la destruction des cellules cibles mĂ©diĂ©e par les NK.

Conséquences physiologiques

La trogocytose peut avoir des consĂ©quences physiologiques de deux maniĂšres : soit parce que les cellules "rĂ©ceptrices" acquiĂšrent et utilisent des molĂ©cules qu'elles n'expriment pas habituellement, soit parce que les cellules "donneuses" sont dĂ©pourvues de molĂ©cules, ce qui peut modifier leur interaction avec leurs partenaires cellulaires. Les molĂ©cules acquises, telles que les molĂ©cules rĂ©gulatrices avec des composants extracellulaires ou intracellulaires, peuvent modifier l'activitĂ© des lymphocytes et orienter plusieurs de leurs fonctions, telles que la migration vers les tissus lĂ©sĂ©s adĂ©quats. De tels fragments de membrane plasmique obtenus pourraient Ă©galement contribuer Ă  la capacitĂ© de prolifĂ©rer, car les lipides sont des composants hautement Ă©nergĂ©tiques qui rĂ©clament de s'Ă©tablir. La trogocytose pourrait ĂȘtre apparue pour la premiĂšre fois chez des organismes trĂšs primitifs afin de se nourrir d'autres cellules. La plupart des fonctions biologiques identifiĂ©es pour la trogocytose ont Ă©tĂ© rapportĂ©es pour les lymphocytes et les cellules dendritiques. Les principales dĂ©couvertes dans ce sens sont les suivantes :

  • les lymphocytes T cytotoxiques ayant capturĂ© des complexes peptide antigĂ©nique-CMH peuvent ĂȘtre tuĂ©s par des CTL spĂ©cifiques de cet antigĂšne (un processus appelĂ© fratricide)
  • les lymphocytes T auxiliaires ayant capturĂ© des complexes peptide antigĂ©nique-CMH sont impliquĂ©s dans une boucle de rĂ©troaction rĂ©gulatrice nĂ©gative conduisant Ă  leur inactivation [10]
  • les cellules dendritiques dĂ©barrassĂ©es des complexes peptide antigĂ©nique-CMH par les lymphocytes T par trogocytose contribuent Ă  la maturation par affinitĂ© de la rĂ©ponse des lymphocytes T en sĂ©lectionnant des lymphocytes T de haute affinitĂ© [11]
  • la modulation Ă  la baisse des molĂ©cules costimulatrices sur les cellules dendritiques mĂ©diĂ©es par les lymphocytes T conduit Ă  la rĂ©gulation de la rĂ©ponse des lymphocytes T [12]
  • le transfert d'antigĂšne entre cellules dendritiques par trogocytose favorise la rĂ©activation des lymphocytes T mĂ©moire au dĂ©triment des lymphocytes T naĂŻfs [13]
  • le transfert d'antigĂšne entre cellules dendritiques par trogocytose contribue au rejet de l'allogreffe [14]

Implications de la trogocytose dans les approches sérologiques

Les anticorps thĂ©rapeutiques peuvent ĂȘtre utilisĂ©s pour traiter le cancer. Un exemple est le rituximab, un anticorps thĂ©rapeutique utilisĂ© pour traiter la leucĂ©mie lymphoĂŻde chronique, qui reconnaĂźt la molĂ©cule CD20 exprimĂ©e par les cellules tumorales et conduit Ă  leur Ă©limination[15]. Cependant, l'utilisation d'une trop grande quantitĂ© d'anticorps rĂ©sulte en partie de l'Ă©limination des complexes rituximab-CD20 de la surface des cellules tumorales par les monocytes par trogocytose. Cet effet conduit Ă  l'Ă©chappement des cellules tumorales par modulation antigĂ©nique. RĂ©duire la dose d'anticorps thĂ©rapeutiques pour limiter l'Ă©tendue de la trogocytose pourrait amĂ©liorer leur efficacitĂ© thĂ©rapeutique[16].

Epratuzumab (un CD22 Mab) agit en utilisant la trogocytose pour transférer le CD22 et d'autres protéines des lymphocytes B des lymphocytes B aux cellules effectrices[17].

Tests basés sur la trogocytose comme outils d'immunosurveillance

Les tests TRAP (TRogocytosis Analysis Protocol) permettent d'identifier, de caractĂ©riser et de purifier les cellules T et B reconnaissant leur antigĂšne spĂ©cifique en fonction de leur capacitĂ© Ă  extraire des molĂ©cules (en l'occurrence des sondes fluorescentes) de la membrane plasmique des cellules prĂ©sentatrices d'antigĂšne[18]. Ces tests nĂ©cessitent un Ă©quipement tel qu'un cytomĂštre en flux mais sont par ailleurs trĂšs bon marchĂ©, faciles Ă  rĂ©aliser, rapides (peuvent ĂȘtre rĂ©alisĂ©s en 3 heures) et applicables Ă  toute population de cellules T ou B. Les tests TRAP sont utilisĂ©s avec succĂšs pour dĂ©tecter les rĂ©ponses des lymphocytes T contre les infections virales[19], le cancer[20], les maladies auto-immunes [21] et les vaccins[22].

Articles connexes

Le processus de Trogocytose est considéré comme différent mais similaire aux processus indépendants connus sous le nom de Phagocytose et Paracytophagie.

Notes et références

  1. Dance, « Core Concept: Cells nibble one another via the under-appreciated process of trogocytosis », Proceedings of the National Academy of Sciences, vol. 116, no 36,‎ , p. 17608–17610 (PMID 31481628, PMCID 6731757, DOI 10.1073/pnas.1912252116)
  2. Joly et Hudrisier, « What is trogocytosis and what is its purpose? », Nature Immunology, vol. 4, no 9,‎ , p. 815 (PMID 12942076, DOI 10.1038/ni0903-815)
  3. Huang, Yang, Sepulveda et Shi, « TCR-Mediated Internalization of Peptide-MHC Complexes Acquired by T Cells », Science, vol. 286, no 5441,‎ , p. 952–954 (PMID 10542149, DOI 10.1126/science.286.5441.952)
  4. Patel, Arnold, White et Nardella, « Class II MHC/Peptide Complexes Are Released from APC and Are Acquired by T Cell Responders During Specific Antigen Recognition », The Journal of Immunology, vol. 163, no 10,‎ , p. 5201–5210 (PMID 10553040, lire en ligne)
  5. Hudrisier, Riond, Mazarguil et Gairin, « Cutting Edge: CTLs Rapidly Capture Membrane Fragments from Target Cells in a TCR Signaling-Dependent Manner », The Journal of Immunology, vol. 166, no 6,‎ , p. 3645–3649 (PMID 11238601, DOI 10.4049/jimmunol.166.6.3645)
  6. Horner, Frank, Dechant et Repp, « Intimate Cell Conjugate Formation and Exchange of Membrane Lipids Precede Apoptosis Induction in Target Cells during Antibody-Dependent, Granulocyte-Mediated Cytotoxicity », The Journal of Immunology, vol. 179, no 1,‎ , p. 337–345 (PMID 17579054, DOI 10.4049/jimmunol.179.1.337)
  7. Barraud‐Lange, Naud‐Barriant, Bomsel et Wolf, « Transfer of oocyte membrane fragments to fertilizing spermatozoa », The FASEB Journal, vol. 21, no 13,‎ , p. 3446–3449 (PMID 17575263, DOI 10.1096/fj.06-8035hyp, S2CID 35630271)
  8. Weinhard, di Bartolomei, Bolasco et Machado, « Microglia remodel synapses by presynaptic trogocytosis and spine head filopodia induction », Nature Communications, vol. 9, no 1,‎ , p. 1228 (PMID 29581545, PMCID 5964317, DOI 10.1038/s41467-018-03566-5, Bibcode 2018NatCo...9.1228W)
  9. Rechavi, Goldstein, Vernitsky et Rotblat, « Intercellular Transfer of Oncogenic H-Ras at the Immunological Synapse », PLOS ONE, vol. 2, no 11,‎ , e1204 (PMID 18030338, PMCID 2065899, DOI 10.1371/journal.pone.0001204, Bibcode 2007PLoSO...2.1204R)
  10. Helft, Jacquet, Joncker et Grandjean, « Antigen-specific T-T interactions regulate CD4 T-cell expansion », Blood, vol. 112, no 4,‎ , p. 1249–1258 (PMID 18539897, PMCID 2515122, DOI 10.1182/blood-2007-09-114389)
  11. Kedl, Schaefer, Kappler et Marrack, « T cells down-modulate peptide-MHC complexes on APCs in vivo », Nature Immunology, vol. 3, no 1,‎ , p. 27–32 (PMID 11731800, DOI 10.1038/ni742, S2CID 20735730)
  12. Qureshi, Zheng, Nakamura et Attridge, « Trans-endocytosis of CD80 and CD86: a molecular basis for the cell extrinsic function of CTLA-4 », Science, vol. 332, no 6029,‎ , p. 600–603 (PMID 21474713, PMCID 3198051, DOI 10.1126/science.1202947, Bibcode 2011Sci...332..600Q)
  13. Wakim et Bevan, « Cross-dressed dendritic cells drive memory CD8+ T-cell activation after viral infection », Nature, vol. 471, no 7340,‎ , p. 629–632 (PMID 21455179, PMCID 3423191, DOI 10.1038/nature09863, Bibcode 2011Natur.471..629W)
  14. Herrera, Golshayan, Tibbott et Ochoa, « A Novel Pathway of Alloantigen Presentation by Dendritic Cells », The Journal of Immunology, vol. 173, no 8,‎ , p. 4828–4837 (PMID 15470023, DOI 10.4049/jimmunol.173.8.4828)
  15. Beum, Kennedy, Williams et Lindorfer, « The Shaving Reaction: Rituximab/CD20 Complexes Are Removed from Mantle Cell Lymphoma and Chronic Lymphocytic Leukemia Cells by THP-1 Monocytes », The Journal of Immunology, vol. 176, no 4,‎ , p. 2600–2609 (PMID 16456022, DOI 10.4049/jimmunol.176.4.2600)
  16. Williams, Densmore, Pawluczkowycz et Beum, « Thrice-Weekly Low-Dose Rituximab Decreases CD20 Loss via Shaving and Promotes Enhanced Targeting in Chronic Lymphocytic Leukemia », The Journal of Immunology, vol. 177, no 10,‎ , p. 7435–7443 (PMID 17082663, DOI 10.4049/jimmunol.177.10.7435)
  17. « Epratuzumab », Immunomedics
  18. Daubeuf, Puaux, Joly et Hudrisier, « A simple trogocytosis-based method to detect, quantify, characterize and purify antigen-specific live lymphocytes by flow cytometry, via their capture of membrane fragments from antigen-presenting cells », Nature Protocols, vol. 1, no 6,‎ , p. 2536–2542 (PMID 17406507, DOI 10.1038/nprot.2006.400, S2CID 25090649)
  19. Beadling et Slifka, « Quantifying viable virus-specific T cells without a priori knowledge of fine epitope specificity », Nature Medicine, vol. 12, no 10,‎ , p. 1208–1212 (PMID 17013384, DOI 10.1038/nm1413, S2CID 9102979)
  20. Machlenkin, Uzana, Frankenburg et Eisenberg, « Capture of Tumor Cell Membranes by Trogocytosis Facilitates Detection and Isolation of Tumor-Specific Functional CTLs », Cancer Research, vol. 68, no 6,‎ , p. 2006–2013 (PMID 18339883, DOI 10.1158/0008-5472.CAN-07-3119)
  21. Bahbouhi, PettrĂ©, Berthelot et Garcia, « T cell recognition of self-antigen presenting cells by protein transfer assay reveals a high frequency of anti-myelin T cells in multiple sclerosis », Brain, vol. 133, no 6,‎ , p. 1622–1636 (PMID 20435630, DOI 10.1093/brain/awq074)
  22. Daubeuf, PrĂ©ville, Momot et Misseri, « Improving administration regimens of CyaA-based vaccines using TRAP assays to detect antigen-specific CD8+ T cells directly ex vivo », Vaccine, vol. 27, no 41,‎ , p. 5565–5573 (PMID 19647811, DOI 10.1016/j.vaccine.2009.07.035)
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