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Magallana gigas

Magallana gigas, aussi appelĂ©e huĂ®tre creuse du Pacifique (prĂ©cĂ©demment Crassostrea gigas), est une huĂ®tre creuse du genre Magallana originaire du nord-ouest de l'ocĂ©an Pacifique. Elle est aussi souvent dĂ©nommĂ©e « huĂ®tre japonaise Â», mais cette dĂ©nomination ambigĂĽe se rapporte plutĂ´t Ă  la Magallana nippona.

Magallana gigas
Description de cette image, également commentée ci-après
Huître creuse japonaise.
Classification selon WoRMS
Règne Animalia
Embranchement Mollusca
Classe Bivalvia
Sous-classe Pteriomorphia
Ordre Ostreida
Super-famille Ostreoidea
Famille Ostreidae
Sous-famille Crassostreinae
Genre Magallana

Espèce

Magallana gigas
Thunberg, 1793

Synonymes

  • Crassostrea gigas (Thunberg, 1793)
  • Ostrea gigas Thunberg, 1793

Introduite dans 48 pays depuis le dĂ©but du XXe siècle (1966 en France) Ă  des fins Ă©conomiques, pour remplacer les stocks d'huĂ®tres indigènes Ă©puisĂ©s par la surexploitation ou les maladies, elle est devenue l'huĂ®tre la plus Ă©levĂ©e au monde[1]. Sa production globale Ă©tait en 2003 de 4,38 millions de tonnes (dont 84 % en Chine), dĂ©passant ainsi toutes les autres espèces marines relevant de l'aquaculture[2]. Elle reprĂ©sente 99 % de la production française au dĂ©but du XXIe siècle[3]. 100 000 tonnes d'huĂ®tres creuses sont produites annuellement en France alors que les huĂ®tres sauvages, qui colonisent prĂ©fĂ©rentiellement tous les substrats rocheux mais Ă©galement les structures ostrĂ©icoles laissĂ©es Ă  l'abandon ou les infrastructures marines humaines (cale, jetĂ©e), constituent un stock de 200 000 tonnes, avec des biomasses pouvant atteindre plus de 50 kg/m2[4].

Espèce colonisatrice, elle est devenue invasive dans plusieurs régions, en raison de différents facteurs (réchauffement climatique, pollution par les nitrates, développement des populations sauvages issues des installations ostréicoles), ce qui pose de multiples problèmes écologiques et économiques (banalisation de la faune littorale, valorisation peu rentable du fait de la contamination éventuelle[5] ou des coûts élevés de ramassage et de transport)[6] - [7].

Description

Cette huître a une coquille inéquivalve (deux valves différentes inéquilatérales), extrêmement rugueuse, très cannelée, et laminée. De forme variable, elle a tendance à être oblongue avec un bord crênelé. Sa valve (inférieure) gauche est profondément creuse et sculptée de grossières arêtes concentriques crénelées et coupantes (arêtes correspondant à des stries de croissance étudiées par la sclérochronologie, et délimitant des lames concentriques écailleuses). Même déformée, cet aspect la rend très caractéristique. Fréquemment, 6 ou 7 côtes épaisses (plis calcaires ondulés) forment une profonde marque sur la marge de la coquille. Sa valve (supérieure) droite plate ou légèrement convexe se repose à l'intérieur de la gauche et a des sculptures similaires. Le crochet et l’umbo qui se forment sur la charnière de la coquille sont souvent envahis par ces plis calcaires. La couleur est souvent grisâtre à verdâtre, avec plusieurs raies et taches pourpres rayonnant loin de l'umbo. L'intérieur de la coquille est blanc, avec un muscle adducteur qui est parfois sombre, mais jamais pourpre ou noir[8].

  • Coquille.
    Coquille.
  • Corps.
    Corps.
  • En cuisine.
    En cuisine.
  • Une coquille de Magallana gigas d'environ 12 cm, trouvĂ©e en Suède. Deux huĂ®tres plus petites y sont attachĂ©es, ainsi qu'une balane et le crampon d'une algue.
    Une coquille de Magallana gigas d'environ 12 cm, trouvĂ©e en Suède. Deux huĂ®tres plus petites y sont attachĂ©es, ainsi qu'une balane et le crampon d'une algue.

Biologie

Reproduction

La sexualité de l'huître creuse a très tôt été décrite comme reposant sur un hermaphrodisme successif. La détermination du sexe est un phénomène complexe qui est régulé par de nombreux facteurs environnementaux (température, nourriture…) et internes, si bien qu'on peut parler aussi d'un mode de reproduction qui relève du gonochorisme (présence d'un seul sexe au plus, mâle ou femelle, chez un individu)[9].

La maturation sexuelle et la gamétogenèse commencent à la fin de l’hiver et se poursuivent jusque vers le mois de juillet, période de la fécondation externe[10]. Cette fécondation a lieu préférentiellement durant le flot de la marée. La ponte peut se produire plusieurs fois durant l’été, lorsque la température de l’eau est supérieure à un seuil (18 à 20 °C), et sa durée aller de quelques minutes à plus d’une heure. Chez la femelle, elle se traduit par de violents mouvements valvaires, ce qui rend la ponte détectable au moyen d’un enregistrement de l’activité valvaire. Chez le mâle, c’est une importante action des cils qui propulse les spermatozoïdes à l’extérieur[11].

La stratégie reproductive de type r est liée à la forte mortalité de la phase planctonique de l'huître. La fécondité est très élevée : une femelle libère entre 20 et 100 millions d’œufs non fécondés par ponte, contre un million pour l'huître plate[12] - [13].

Cycle de vie
Cycle de vie bentho-pélagique de l'huître avec quatre principaux stades de développement : l'étape embryonnaire, larvaire, le naissain et l'âge adulte.

Cette huître est une espèce ovipare hermaphrodite protandre successive[14].

La gamĂ©togĂ©nèse est active au printemps et se traduit par le dĂ©veloppement de la gonade autour de la glande digestive (en maturant, cet organe reproducteur devient blanchâtre : l'huĂ®tre est dite « laiteuse Â»). La fĂ©condation externe a lieu après l'Ă©mission de spermatozoĂŻdes et d'ovocytes une ou plusieurs fois par Ă©tĂ© lorsque la tempĂ©rature de l'eau est supĂ©rieure Ă  un seuil d'environ 18 – 20 °C[15]. L'Ĺ“uf fĂ©condĂ© donne une larve planctonique qui dĂ©rive avec la masse d’eau pendant environ 20 jours[16]. Cette phase larvaire passe par diffĂ©rents stades : la larve trochophore devient, au bout de 24 heures environ, une larve D puis une larve vĂ©ligère qui mesure 60 Âµm. Vivant de ses rĂ©serves Ă©nergĂ©tiques, elle devient strictement planctotrophe au bout de 5 jours environ[17].

La larve vĂ©ligère dispose d’un velum, une sorte de voile ciliĂ©, qui lui sert Ă  se dĂ©placer et Ă  capturer ses proies. Elle se recouvre rapidement d'une coquille larvaire, la prodissoconque (en) (larve umbonĂ©e). Ă€ la fin du stade larvaire (en moyenne deux Ă  trois semaines), elle atteint 300 Âµm, se munit d’un pied (larve dite pĂ©divĂ©ligère) qui lui permet de ramper pour choisir le substrat sur lequel elle va se fixer et lui sĂ©crète le ciment pour la fixation. Une fois fixĂ©e, la larve devenue naissain commence sa mĂ©tamorphose et le dĂ©veloppement des organes de l’adulte[18].

Une phylogénie controversée

Originellement placée dans le genre-type des huîtres Ostrea, cette espèce a été connue pendant tout le XXe siècle sous le nom de « Crassostrea gigas », mais une étude génétique de 2017 l'a redéplacée dans le genre Magallana, ainsi que plusieurs autres espèces du même genre[19].

Cependant, cette classification phylogénétique est controversée car elle repose sur un critère qui, selon un consortium international de chercheurs reconnus[20], est trop partiel pour être validé. En effet, l'utilisation d'un seul critère moléculaire chez une des rares espèces de mollusques marins d'intérêt commercial dont le génome entier est disponible depuis plusieurs années [21] ne fait pas consensus sur sa pertinence. En conséquence, cette proposition de changement taxonomique,pour l'espèce Crassostrea gigas, qui n'est supportée à ce jour que par deux articles émanant des mêmes auteurs n'est pas adoptée par la communauté scientifique spécialisée. Ceci est illustré par la persistance de la dénomination Crassostrea gigas dans une large majorité d'articles de la littérature scientifique spécialisée depuis la parution en 2017 de la proposition de changement taxonomique par Salvi et collègues. Toutefois, l'organisme officiel de nomenclature biologique, le World Register of Marine Species, nomme désormais cette espèce Magallana gigas[22] .

Selon des critères similaires, plusieurs analyses phylogéniques font apparaître l'« huître portugaise » (Magallana angulata) comme un morphotype local de l'huître creuse japonaise[23] - [24].

Voir aussi

Références taxonomiques

Bibliographie
  • Salvi D. et Mariottini P., « Molecular taxonomy in 2D: a novel ITS2 rRNA sequence-structure approach guides the description of the oysters' subfamily Saccostreinae and the genus Magallana (Bivalvia: Ostreidae) », Zoological Journal of the Linnean Society, vol. 179, no 2,‎ , p. 263-276 (DOI 10.1111/zoj.12455, lire en ligne).

Liens externes

Notes et références
  1. (en) Ruesink, J.L., HS. Lenihan, A.C. Trimble, K.W. Heiman, F. Micheli, J.E. Byers, & M.C. Kay, « Introduction of non-native oysters: Ecosystem effects and restoration implications », Annual Review of Ecology Evolution and Systematics, vol. 36,‎ , p. 643–689 (DOI 10.1146/annurev.ecolsys.36.102003.152638).
  2. Statistiques de production. Source FAO FishStat.
  3. Marie Lescroart, Les huîtres. 60 clés pour comprendre, éditions Quæ, , p. 37-43.
  4. (en) Bruno Cognie, Joël Haure, Laurent Barillé, « Spatial distribution in a temperate coastal ecosystem of the wild stock of the farmed oyster Crassostrea gigas (Thunberg) Author links open overlay panel », Aquaculture, vol. 259, nos 1-4,‎ , p. 249-259 (DOI 10.1016/j.aquaculture.2006.05.037).
  5. L'utilisation des coquilles broyées comme amendement calcaire est impossible lorsqu'elles proviennent de la prolifération dans les ports en estuaire car elles sont contaminées par des résidus d'hydrocarbures aromatiques polycycliques provenant des carburants des bateaux et des produits chimiques toxiques contenus dans les peintures antifouling.
  6. (GISD 2008)
  7. Marie Lescroart, Les huîtres, Éditions Quæ, , p. 39-40
  8. (en) P. J. Hayward, J. S. Ryland, Handbook of the Marine Fauna of North-West, OUP Oxford, , p. 586
  9. (en) D.B Quayle, Pacific oyster culture in British Columbia, 1969, the queen’s printer, p. 23
  10. J. L. Dantec, « Ecologie et reproduction de l’huitre portugaise (Crassostrea angulata Lamarck) dans le bassin d’Arcachon et sur la rive gauche de la Gironde », 1968, vol. 32, no 3,‎ revue des travaux de l’institut des pêches maritimes, p. 237—362
  11. E. His, « L’émission des gamètes chez l’huître portugaise (Crassostrea angulata LMK) », Revue des Travaux de l’Institut des Pêches Maritimes, vol. 34, no 1,‎ , p. 17—22
  12. (en) Paul S. Galtsoff, « The American Oyster Crassostrea Virginica Gmelin », Fishery Bulletin, vol. 64,‎ , p. 237
  13. André Gérard, « Avancées récentes sur la reproduction des huîtres », La pisciculture française, no 134,‎ , p. 71-76 (lire en ligne)
  14. Marie Lescroart, Les huîtres. 60 clés pour comprendre, éditions Quæ, , p. 47.
  15. (en) Roger Mann, « Some Biochemical and Physiological Aspects of Growth and Gametogenesis in Crassostrea Gigas and Ostrea Edulis Grown at Sustained Elevated Temperatures », Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, vol. 59, no 01,‎ , p. 95-110 (DOI 10.1017/S0025315400046208).
  16. (en) Kohman Y. Arakawa, « Natural spat collecting in the Pacific oyster Crassostrea gigas (Thunberg) », Marine Behaviour and Physiology, vol. 17, no 2,‎ , p. 95-128 (DOI 10.1080/10236249009378760).
  17. (en) B. Rico-Villa, I. Bernard, R. Robert & S. Pouvreau, « A Dynamic Energy Budget (DEB) growth model for Pacific oyster larvae, Crassostrea gigas », Aquaculture, vol. 305, no v,‎ , p. 87
  18. Pierre Mollo, Anne Noury, Le Manuel du plancton, ECLM, , p. 101
  19. Salvi D. et Mariottini P., « Molecular taxonomy in 2D: a novel ITS2 rRNA sequence-structure approach guides the description of the oysters' subfamily Saccostreinae and the genus Magallana (Bivalvia: Ostreidae) », Zoological Journal of the Linnean Society, vol. 179, no 2,‎ , p. 263-276 (DOI 10.1111/zoj.12455, lire en ligne).
  20. B. L. Bayne, M. Ahrens, S. K. Allen et M. Anglès D'auriac, « The Proposed Dropping of the Genus Crassostrea for All Pacific Cupped Oysters and Its Replacement by a New Genus Magallana: A Dissenting View », Journal of Shellfish Research, vol. 36, no 3,‎ , p. 545–547 (ISSN 0730-8000, DOI 10.2983/035.036.0301, lire en ligne, consulté le )
  21. (en) Guofan Zhang, Xiaodong Fang, Ximing Guo et Li Li, « The oyster genome reveals stress adaptation and complexity of shell formation », Nature, vol. 490, no 7418,‎ , p. 49–54 (ISSN 1476-4687, DOI 10.1038/nature11413, lire en ligne, consulté le )
  22. World Register of Marine Species, consulté le 6 janvier 2019
  23. (en) Ó Foighil1, D., Gaffney, P.M., Wilbur, A.E. & Hilbish, T.J. (1998). Mitochondrial cytochrome oxidase I gene sequences support an Asian origin for the Portuguese oyster Crassostrea angulata. Marine Biology, 131 (3) : 497-503. Résumé
  24. (en) Reece, K.S., Cordes, J.F., Stubbs, J.B., Hudson, K.L. & Francis, E.A. (2007). Molecular phylogenies help resolve taxonomic confusion with Asian Crassostrea oyster species. Marine Biology, DOI 10.1007/s00227-007-0846-2. Résumé
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