Analogue d'acide nucléique

Structure chimique Morpholino

Les riboses de la molécule d'ARN sont très facilement hydrolysables, ce qui la rend difficile à synthétiser et utiliser de façon fiable. Des dérivés de ribose peuvent donc être utilisés. Les analogues les plus communs sont l'ARN substitué en 2'O-méthyl, l'acide nucléique verrouillé (Locked Nucleic Acid ou LNA), le morpholino[2] - [3] et les acides nucléiques peptidiques (Peptide nucleic acid ou PNA). Bien que ces oligonucléotides aient des squelettes différents, ils sont toujours capables de s'hybrider à l'ARN ou l'ADN, mais ils ne sont pas sensibles à l'hydrolyse par les nucléases. Il n'existe pas de méthode enzymatique pour les fabriquer, il est nécessaire de recourir à des méthodes de synthèse telles que la stratégie de la phosphoramidite ou (pour le PNA) la synthèse peptidique.

Il est intéressant de noter que de tels analogues d'acides nucléiques pourraient avoir joué un rôle dans l'apparition de la vie, l'ARN connu actuellement étant trop complexe pour avoir été le premier acide nucléique. Des analogues plus simples comme le GNA, le TNA et le PNA pourraient être des candidats plus vraisemblables.

On distingue les bases pyrimidines et purines. Elles sont capables de s'apparier grâce à deux ou trois liaisons hydrogène entre une fonction cétone) et une fonction amine ; elles peuvent aussi s'empiler par l'action de leurs cycles aromatiques (interaction de π-stacking).

Purine	Pyrimidine

Structure de l'aminoallyl-uridine

Des fluorophores comme la rhodamine et la fluorescéine sont liés au cycle voisin du sucre (en para) par un bras flexible, de sorte qu'il soit positionné dans le sillon majeur de la double hélice. En général, on synthétise d'abord la séquence avec des nucléotides ayant seulement le bras, puis l'on couple ces bras à des fluorophores (marquage indirect). L'enzyme utilisée, la Taq polymérase, n'est en effet pas capable d'incorporer directement les fluorophores en raison de leur taille.

La plus fréquemment utilisée est la 2-aminopurine, qui présente la propriété intéressante d'être fortement fluorescente quand elle est libre en solution, mais considérablement moins lorsqu'elle est incorporée à un brin d'acide nucléique. La variation de l'intensité dépend de la séquence, mais elle est de l'ordre de cent fois[4].

Il existe d'autres bases du même type : 3-MI, 6-MI, 6-MAP[5], pyrrolo-dC[6] et ses dérivés[7], bases furaniques modifiées [8] et bien d'autres[9] - [10] - [11] - [12].

La fluorescence de ces bases est très dépendante de leur environnement direct. Ceci est utile pour observer les interactions entre protéines et ADN, et les transferts d'électron au sein de l'ADN. D'autres bases comme la 1,3-Diaza-2-oxophenothiazine, tC, ont un rendement de fluorescence presque indépendant des bases environnantes[13] - [14]. Par ailleurs, elles ont peu d'influence sur les propriétés physiques et chimiques de l'ADN, ce qui en fait des outils appréciables pour les analyses FRET. Le tC_nitro, une base jouant le rôle d'accepteur de fluorescence, a été développé à cet effet[15]. Le couple tC^O (donneur)/ tC_nitro (accepteur) est ainsi la première paire pour FRET utilisant des bases nucléiques.

Paires de bases naturelles
Une paire GC, formant 3 liaisons hydrogène	Une paire AT, formant 2 liaisons hydrogène

La diaminopurine (DAP) est présente naturellement chez le Cyanophage S-2L. Utilisée à la place de l'adénine, elle forme trois liaisons hydrogène avec la thymine, ce qui rend le brin plus stable et rend les interactions AT et GC aussi fortes l'une que l'autre[16]. Cela peut être utilisé pour analyser les interactions moléculaires mettant en jeu cette différence de force.

D'autres bases comme l'isoguanine et l'isocytosine (qui ont des groupements amine et cétone inversés par rapport à leurs homologues) peuvent être incorporées lors d'une amplification par PCR, même en présence des quatre bases canoniques[17].

Paires de bases absentes dans la nature
DAP-T	X-DAP	iG-iC

Il est également possible de créer des bases qui s'apparient par interactions hydrophobes. On a par exemple le 2,4-difluorotoluène, un analogue de thymine, et le 4-méthylbenzimidazole, analogue d'adénine[18], ou encore l'isoquinoline et la pyrrolo[2,3-b]pyridine[19].

Ces bases sont capables de s'apparier sans discrimination avec n'importe quelle autre base. Généralement, elles diminuent considérablement la température de fusion de la séquence. Parmi elles, on trouve les dérivés de la 2'-déoxyinosine (désoxynucléotide d'hypoxanthine), les analogues de nitroazole, et les bases aromatiques hydrophobes qui se lient sans liaison hydrogène. Elles n'ont cependant pas montré d'intérêt particulier dans la constitution d'amorces pour la polymérisation.

Il existe un jeu de bases nucléiques étendu, appelé xDNA, qui comporte en plus des quatre bases canoniques, quatre bases étendues qui sont en fait les bases canoniques auxquelles on a ajouté un cycle benzène. Une base classique s'apparie avec une base étendue, de sorte que la longueur totale de la paire de base soit constante. De cela, il résulte quatre combinaisons possibles : xA-T, xT-A, xC-G et xC-C. Ce système peut avoir une utilité pour des cas particuliers de recherche scientifique. Le yDNA est un système similaire, mais le benzène sert cette fois-ci à élargir les bases[20].

Paires de bases artificielles ayant des propriétés particulières
Base F-Z : Pas de liaison hydrogène	Base S-Pa: Trois liaisons hydrogène	Base xA-T : Liaison similaire à A-T

Les liaisons de type Watson-Crick peuvent être remplacées par un ion métallique central. Les nucléosides jouent alors le rôle de ligands. Différentes configurations bidentates permettent d'apparier deux nucléosides autour d'un atome métallique central : en tétraèdre, en dodécaèdre, et carrée plane. La formation d'une telle paire de base peut résulter de l'appariement non-canonique des bases habituelles en présence d'un ion métallique, ou du remplacement des atomes d'hydrogène impliqués dans les liaisons de Watson et Crick par des atomes métalliques[21].

L'introduction d'ions métalliques dans un duplex d'ADN peut lui conférer des propriétés de perméabilité magnétique[22] - [23] ainsi qu'une stabilité augmentée[24].

Un exemple bien documenté est la formation de la paire de bases T-Hg-T, qui met en jeu deux thymines reliées par un ion Hg<2+>[25] - [26]. Deux thymines ne peuvent pas s'apparier entre elles dans la nature, c'est donc bien un exemple d'appariement impossible stabilisé par l'action d'un métal. Il est également possible de former des paires A-Zn-T et G-Zn-C à pH élevé. Les ions Co²⁺ et Ni²⁺ peuvent aussi former ce type de complexes. Ici, le cation divalent est coordiné en complexe avec les bases, même si la configuration exacte n'est pas parfaitement connue[27].

De nombreuses nucléobases artificielles ont été développées pour optimiser la complexation avec des métaux. Par exemple, un nucléoside modifié avec un pyridine-2,6-dicarboxylate se complexe fortement et spécifiquement avec les ions Cu²⁺, sans se lier significativement avec les autres cations (cette affinité peut s'expliquer par la formation d'un complexe tridendate)[28]. Ce type de technologie pourrait constituer, dans le futur, un espoir pour la fabrication de câbles métalliques nanoscopiques capables de s'assembler eux-mêmes[29].