Traitement systémique
Un traitement systémique (parfois appelé « endothérapie ») est un traitement préventif, curatif ou destructif réalisé généralement au moyen d'un produit chimique destiné à pénétrer à l'intérieur un organisme pour le guérir, le détruire ou le protéger contre certains de ses agresseurs. Les traitements systémiques se sont beaucoup développés au cours des dernières décennies en agriculture (insecticides, herbicides…) et en médecine (chimiothérapie…).
Modes d'action
Chez les végétaux
En agriculture, de nombreux produits sont actuellement utilisés. La molécule active est absorbée par la plante, au cours de la germination de la graine, par les feuilles ou les racines, puis elle circule dans le système vasculaire de la plante. Les traitements peuvent être effectués sur les semences, par arrosage ou pulvérisation ou simple contact sur le feuillage ou les racines (fumigation), par injection dans le tronc des arbres…).
Chez les animaux
Dans le cadre de la médecine vétérinaire, la molécule active absorbée est diffusée par le sang et la lymphe. Par exemple, on traite les rongeurs via des appâts afin de les débarrasser de Phlebotomus papatasi Scopoli [1], ou encore avec certains traitements antiparasitaires (ex. : ivermectine d'animaux domestiques et familiers[2])
Chez l'homme
Pour lutter contre le cancer sur l'ensemble du corps, les traitements systémiques tels que la chimiothérapie et l'hormonothérapie peuvent agir à la fois sur la tumeur d'origine et sur les éventuelles métastases[3].
Inconvénients de certains traitements insecticides systémiques
Les néonicotinoïdes sont des traitements systémiques insecticides toxiques pour les insectes suceurs, piqueurs ou phytophages ou divers autres parasites,[4]. Ils ont l'inconvénient pour différentes espèces cultivées d'exposer les pollinisateurs, de manière chronique à de faibles doses du pesticide[5]. Largement utilisés depuis quelques années, d'abord pour les plantes agricoles en traitement des semences principalement[6], puis pour certains arbres fruitiers[7], arbres élevés en plein champ (ex. : plantations de palmiers à huile[8] ou de cocotiers [9]) ou en pépinières (résineux ainsi traités contre l'hylobe[10], en remplacement du carbosulfan[11].
Présentant l'avantage de réduire ou d'éviter les traitements en culture nécessitant de fortes quantités de produits, ils sont très efficaces à faibles doses, ils sont rapidement (à la fin du XXe siècle) devenus les pesticides les plus utilisés dans le monde[12]. En 2015 les néonicotinoïdes étaient mis sur le marché et autorisés dans plus de 120 pays, environ 60 % de tous les néonicotinoïdes étaient livrés en tant que traitements des semences ou du sol[13] - [14] - [15].
Ils ont cependant contribué à polluer les milieux agricoles où ils sont utilisés. Des néonicotinoïdes et leurs métabolites, sont désormais retrouvés à des doses biologiquement actives dans de nombreux écosystèmes, devenant une source d'exposition chronique (et parfois aiguë) d'une grande partie de la faune sauvage, initialement non ciblée. Des études sur le contenu alimentaire des rayons de ruches d'abeilles démontrent une exposition chronique des apidés aux néonicotinoïdes, au fipronil et à leurs métabolites (généralement dans la gamme 1-100 ppb), en mélange à d'autres pesticides et toxiques dont certains bien connus pour agir synergiquement avec certains néonicotinoïdes.
Effets sur l'environnement
Les insecticides systémiques étant relativement récents, leurs effets environnementaux ne sont probablement qu'incomplètement évalués et mesurés[16].
Ils n'ont théoriquement pas d'effet sur les insectes ne consommant pas de fragments ni fluides issus de la plante traitée, mais :
- certains autres insectes peuvent être touchés lors de l'application (ces molécules sont très petites ce qui est propice à leur envol et dispersion dans l'environnement, et les néocotinoïdes sont en outre très solubles dans l'eau) ;
- ces substances peuvent indirectement toucher les prédateurs des insectes indésirés (ceux qui nuisent à la plante) par voie alimentaire et donc avoir l'effet inverse de celui souhaité puisque la « faune utile » a en général un cycle de vie plus long et une fécondité moindre ;
- certains pesticides systémiques (ex. : à base d'imidaclopride) sont présents dans le pollen et le nectar[17]. Ils sont fortement soupçonnés de contribuer à la régression générale de la plupart des espèces de pollinisateurs et notamment au syndrome d'effondrement des colonies d'abeilles[18]. En 2017, il est démontré que le fipronil affecte la fécondité des apidés mâles en se montrant cytotoxique pour leurs spermatozoïdes[19] ;
- ces pesticides présents dans la plante vivante ou morte peuvent interagir avec la rhizosphère[20], ou être ingérés par des animaux herbivores, avec des effets mal évalués. Les effets écosystémiques de leurs résidus sont également mal connus mais pour le fipronil par exemple ils peuvent être plus toxique que le molécule-mère ;
- leur demi-vie est parfois longue, surtout à l'abri du soleil dans le sol : celle des néonicotinoïdes peuvent ainsi y dépasser 1 000 jours[21]. Ils peuvent ainsi rapidement s'accumuler dans les zones agricoles là où ils sont utilisés plusieurs années de suite. On a aussi montré qu'ils peuvent « persister dans des plantes ligneuses pour des périodes dépassant une année »[21].
Lien externe
Notes et références
- Derbali, M., Chelbi, I., Cherni, S., Barhoumi, W., Boujaâma, A., Raban, R., ... & Zhioua, E. (2013). Évaluation au laboratoire et sur le terrain de l’imidaclopride sous forme d’appâts pour les rongeurs afin de contrôler les populations de Phlebotomus papatasi Scopoli, 1786 (Dipetra: Psychodidae). Bulletin de la Société de pathologie exotique, 106(1), 54-58.
- Beugnet, F. (2004). Antiparasitaires externes chez les carnivores domestiques. EMC-Vétérinaire, 1(4), 138-153 (résumé)
- « Les différents types de traitements », sur Fondation contre le cancer (consulté le ).
- SUCHAIL S., BELZUNCES L.P., VAISSIÈRE B.E., 2003. Toxicité aiguë de l’imidaclopride et de ses métabolites chez l’abeille domestique Apis mellifera. Abeilles et fleurs, 643, p. 27-30
- RORTAISA., ARNOLD G., HALM M-P., TOUFFET-BRIENS F., 2005. Modes of honey-bees exposure to systemic insecticides: estimated amounts of contaminated pollen and nectar consumed by different categories of bees. Apidologie , 36, p. 71-83.
- Schiffers, B., & Fraselle, J. (1988). Le point sur les techniques de traitement des semences. In Annales de Gembloux (Vol. 94, No. 4). Gembloux.
- Rouas, G., DESTOMBES, M., & HULIN, L. (2005). L'acétamipride? Insecticide systémique pour arbres fruitiers, cultures légumières et tabac. Phytoma-La Défense des végétaux, (581), 53-55.
- Philippe, R., & Diarrassouba, S. (1979). Méthode de lutte contre Coelaenomenodera par introduction d'insecticide systémique dans le stipe du palmier à huile. Oléagineux. Revue internationale des corps gras.
- Ginting C. & Desmier de Chenon R. (1987) Utilisation de la technique d'absorption racinaire d'insecticides systématiques pour une protection à long terme des cocotiers et autres cultures industrielles. Oléagineux, 42(2), 63-79.
- Lempérière, G., & JULIEN, J. M. (1989). Premiers résultats de tests pour l'évaluation de l'efficacité d'un insecticide systémique contre l'hylobe (Hylobius abietis l., coll. Curculionidae).
- LEMPERIERE, G., & JULIEN, J. (2003). Protection contre l'hylobe du pin: Efficacité d'un insecticide systémique à base de carbosulfan. Revue forestière française, 55(2), 129-140.
- Margaret R. Douglas et John F. Tooker, « Large-Scale Deployment of Seed Treatments Has Driven Rapid Increase in Use of Neonicotinoid Insecticides and Preemptive Pest Management in U.S. Field Crops », Environmental Science & Technology, vol. 49, no 8,‎ , p. 5088–5097 (ISSN 0013-936X et 1520-5851, DOI 10.1021/es506141g, lire en ligne, consulté le )
- Jeschke P, Nauen R, Schindler M, Elbert A (2011) Overview of the status and global strategy for neonicotinoids. J Agric Food Chem 59:2897–2908
- Van der Sluijs JP, Simon-Delso N, Goulson D, Maxim L, Bonmatin J-M, Belzunces LP (2013) Neonicotinoids, bee disorders and the sustainability of pollinator services. Curr Opin Environ Sustain 5:1–13
- Simon-Delso N, Amaral-Rogers V, Belzunces LP, Bonmatin JM, Chagnon M, Downs C, Furlan L, Gibbons DW, Giorio C, Girolami V, Goulson D, Kreutzweiser DP, Krupke C, Liess M, Long E, McField M, Mineau P, Mitchell EAD, Morrissey CA, Noome DA, Pisa L, Settele J, Stark JD, Tapparo A, van Dyck H, van Praagh J, van der Sluijs JP, Whitehorn PR, Wiemers M (2014) Systemic insecticides (neonicotinoids and fipronil): trends, uses, mode of action and metabolites | Environ Sci Pollut Res (this issue)
- Maxim L & van der Sluijs J.P L’incertitude: cause ou effet des débats entre les acteurs? Analyse de cas du risque de l’insecticide Gaucho® vis-à -vis des abeilles
- Rortais, A., Arnold, G., Halm, M. P., & Touffet-Briens, F. (2005). Modes of honeybees exposure to systemic insecticides: estimated amounts of contaminated pollen and nectar consumed by different categories of bees. Apidologie, 36(1), 71-83.
- Colin, M. E. (2001, May). Influence des insecticides systémiques sur l’apprentissage spatio-temporel de l’abeille. In Public conférence INRA/UAPV (Vol. 22).
- Kairo G, Poquet Y, Haji H, Tchamitchian S, Cousin M, Bonnet M, ... & Brunet J.L (2017). « Assessment of the toxic effect of pesticides on honey bee drone fertility using laboratory and semifield approaches: A case study of fipronil. Environmental Toxicology and Chemistry. » | 4 avril 2017 |Environ Toxicol Chem. |doi:10.1002/etc.3773 | URL : http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/etc.3773/full
- Sarr, B., Ndiaye, F., & Diop, T. A. (2014). Effet de deux types d’insecticides sur la mycorhization arbusculaire et le développement de deux variétés de pomme de terre (Solanum tuberosum). International Journal of Biological and Chemical Sciences, 7(5), 1902-1909.
- Bonmatin, J. M., Giorio, C., Girolami, V., Goulson, D., Kreutzweiser, D. P., Krupke, C., ... & Noome, D. A. (2015). Environmental fate and exposure; neonicotinoids and fipronil. Environmental Science and Pollution Research, 22(1), 35-67.
Voir aussi
Articles connexes
Bibliographie
- Al-Sayeda, H. (2007). Transfert d'un insecticide systémique, l'imidaclopride, chez la tomate: implication du transport phloémien.
- Carême, C., Perreaux, D., & Schiffers, B. (1993). L'enrobage des semences de coton au Burundi à l'aide d'insecticides systémiques pour la maîtrise d'Aphis gossypii Glov. In Proceedings ANPP-Troisième conférence internationale sur les ravageurs en agriculture.
- Catrina, I., Popa, A., Constantinesco, V., & Constantinesco, O. (1963, April). Rétablissement des processus d'absorption et diffusion des insecticides systémiques au Populus x Euramericana dode guinier «ROBUSTA». In Radiation and radioisotopes applied to insects of agricultural importance: proceedings of the Symposium on the Use and Application of Radiosotopes and Radiation in the Control of Plant and Animal Insect Pests (p. 211). International Atomic Energy Agency.
- Charvet, R., Katouzian-Safadi, M., Colin, M. E., Marchand, P. A., & Bonmatin, J. M. (2004). Insecticides systémiques : de nouveaux risques pour les insectes pollinisateurs. In Annales pharmaceutiques françaises (Vol. 62, No. 1, p. 29-35) . Elsevier Masson (résumé).
- Gabriel, W., Szulc, J., & Wislocka, M. (1982). Influence de la distance des sources d'infection sur l'effet de traitements à l'aide d'insecticides systémiques sur la propagation des virus Y et M de la pomme de terre. Potato Research, 25(1), 1-11 (résumé).
- Schiffers, B., Tondeur, R., Verstraeten, C., & Dreze, P. (1993). Évaluation d'une technique d'injection d'insecticides dans les troncs pour la lutte intégrée contre Eupulvinaria hydrangeae Steinw.(Hom. Coccidae). In Proceedings ANPP-BCPC-Second Symposium International sur les Techniques d'Application des Pesticides. France.
- Tomizawa, M., & Yamamoto, I. (1993). Structure-activity relationships of nicotinoids and imidacloprid analogs. Nippon Noyaku Gakkaishi, 18(1), 91-98.